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通讯作者:

朱立国,E-mail:zhuliguo2002@163.com

中图分类号:R446.62

文献标识码:A

文章编号:1007-4368(2022)11-1621-06

DOI:10.7655/NYDXBNS20221120

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目录contents

    摘要

    目的:建立并评价新型冠状病毒即严重急性呼吸综合征冠状病毒2型(severe acute respiratory syndrome coronavirus 2,SARS-CoV-2)特异性抗体定量检测方法,为新型冠状病毒肺炎(corona virus disease-2019,COVID-19)疫情防控提供血清学研判支持。方法:采集2020年1—2月SARS-CoV-2感染者及其密切接触者的血清和咽拭子样本,分别用RT-qPCR法检测SARS- CoV-2核酸,微流控法和胶体金法检测SARS-CoV-2特异性抗体,并比较分析检测结果的一致性。结果:微流控法、胶体金法检测SARS-CoV-2特异性IgG抗体的结果均与RT-qPCR方法一致。发病早中期(<14 d)与后期(≥14 d)微流控法IgG抗体阳性率差异有统计学意义。结论:微流控法是一种新型可定量的SARS-CoV-2抗体检测法,检测结果准确且耗时短。

    Abstract

    Objective:This study aims to establish and evaluate antibody quantitative detection methods of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2(SARS-CoV-2),in order to provide serological data base for corona virus disease-2019(COVID-19)detection and prevention. Methods:The serum and throat swab samples of SARS-CoV-2 infected persons and their close contacts from January to February 2020 were collected,and the SARS-CoV-2 nucleic acid was detected by RT-qPCR,the SARS-CoV-2 specific antibody was detected by microfluidic method and colloidal gold method,respectively,and the consistency of the results was compared and analyzed. Results:The results of detection of SARS - CoV - 2 specific IgG antibody by microfluidic method and colloidal gold method were consistent with those by RT-qPCR,but there were significant differences in IgG positive rates between the early-middle and the late stages by the microfluidic method. Conclusion:As a novel quantitative way to detect SARS-CoV-2 antibodies,the microfluidic method is brief and accurate.

  • 2019 年出现的由新型冠状病毒即严重急性呼吸综合征冠状病毒2型(severe acute respiratory syn⁃ drome coronavirus 2,SARS⁃CoV⁃2)传染引起的新型冠状病毒肺炎(corona virus disease2019,COVID⁃19),在全球暴发并加速扩散流行[1-2],现已有上亿人感染,死亡数百万人,对社会产生极大影响[3],给世界各国造成巨大的疾病负担[4]。准确快速开展血清学检测,尽早发现感染者[5-6],不仅能及时有效治疗患者,还能更有效地进行传染病防控[7-8]

  • 我国《新型冠状病毒肺炎防控方案(第八版)》 (联防联控机制综发〔2021〕51号)明确提出:未接种新冠病毒疫苗者新冠病毒特异性免疫球蛋白M(im⁃ munoglobulin M,IgM)抗体和免疫球蛋白G(immuno⁃ globulin G,IgG)抗体均为阳性可判定为确诊病例。建立SARS⁃CoV⁃2抗体的快速定量检测方法是近期 SARS⁃CoV⁃2研究和防控工作的重点。

  • 1 对象和方法

  • 1.1 对象

  • 入组 2020 年 1—2 月江苏省 SARS⁃CoV⁃2 感染逆转录荧光定量 PCR(reverse transcription⁃quantita⁃ tive Real ⁃time PCR,RT ⁃qPCR)检测阳性确诊病例 160例、密切接触者120例的咽拭子与血清,排除其中基本信息登记不全、样本不合格或样本量不足者 (确诊病例4例、密切接触者1例),编盲后检测,记录结果后,揭盲、统计数据。

  • 1.2 方法

  • 1.2.1 微流控法

  • SARS ⁃ CoV ⁃ 2 微流控法(microfluidic method, MF)IgG/IgM抗体检测试剂盒(天津中新科炬生物制药股份有限公司),荧光免疫分析仪(F10pro)同时检测血清中 IgG 与 IgM 抗体,微流控法通过控制试剂卡内部微量荧光抗原抗体复合物的流动,采集样本中与抗体含量呈正相关的荧光信号,实现对抗体的定量检测[9]。根据产品说明书定量吸取5 μL血清/ 血浆或10 μL全血样本加入到350 μL样本稀释液中,吸取 35 μL 稀释后样本液加入加样孔中,4~20 min 内,沿试剂卡黑色箭头方向,插入荧光免疫分析仪判读结果,仪器分析并记录结果。

  • 1.2.2 胶体金法

  • SARS ⁃CoV ⁃2 胶体金法(colloidal gold method, CG)IgG/IgM抗体检测试剂盒(天津中新科炬生物制药股份有限公司),检测血清中 IgG 与 IgM 抗体,实验步骤与结果判定参照产品说明书。

  • 1.2.3 荧光RT⁃PCR法(RT⁃qPCR)

  • 病毒核酸提取试剂提取咽拭子核酸(西安天隆科技有限公司),SARS⁃CoV⁃2 核酸检测试剂盒(荧光 PCR法)(上海伯杰医疗科技有限公司)进行RT⁃qPCR 检测,反应条件体系均按照试剂说明书进行。同时进行RNP基因(内参)检测,合成引物序列。RNP基因检测结果阳性样本为有效结果。有效结果根据上述SARS⁃CoV⁃2核酸检测试剂盒说明书判定结果阴阳性。

  • 1.3 统计学方法

  • 应用 Excel 软件对流行病学资料和实验室数据进行录入和管理,资料分析使用 SPSS 22.0 和 Stata14.0软件。阳性率等定性资料通过卡方检验分析;微流控S/CO(标本的吸光度)值等定量资料,当方差不齐时采用非参数检验分析。以核酸检测结果为金标准,统计分析不同检测指标的灵敏度、特异度、Kappa值。P < 0.05为差异有统计学意义。

  • 2 结果

  • 2.1 样本情况

  • 入选 2020 年 1—2 月 SARS⁃CoV⁃2 感染确诊病例(确诊病例)与确诊病例的密切接触者(密接)共 275 例,其中确诊病例 156 例(56.7%),密接 119 例 (43.3%);男136例(49.5%),女139例(50.5%);年龄 (40.56±17.44)岁(1~88岁),中位年龄41岁。

  • 2.2 检测结果

  • 2.2.1 检测方法比较

  • 微流控与胶体金检测卡相对于 RT⁃qPCR 检测能力分析见表1。与RT⁃qPCR检测法比较,微流控法 IgM 检测灵敏度与特异度分别是 64.7%、99.2%,微流控法 IgG 检测灵敏度与特异度分别是 98.7%、 100.0%;胶体金法IgM检测灵敏度与特异度分别是 55.7%、100.0%,胶体金法IgG检测灵敏度与特异度分别是96.8%、98.3%。一致性分析发现,微流控法 IgM(Kappa=60.6%)与胶体金法IgM(Kappa=52.2%) 检测与 RT⁃qPCR 检测比较一致性中等;微流控法 IgG(Kappa=98.5%)与胶体金法 IgG(Kappa=94.8%) 检测与RT⁃qPCR检测高度一致。

  • 表1 微流控与胶体金检测卡相对于RT⁃qPCR检测能力分析

  • Table1 Analysis of detection ability of the microfluidic and the colloidal gold methods relative to RT⁃qPCR

  • 2.2.2 COVID⁃19确诊病例IgG、IgM检测结果分析

  • 本研究中,COVID⁃19确诊病例共156例,男75例 (48.1%),女81例(51.9%);年龄为(43.52±17.14)岁 (4~77 岁),中位年龄 46 岁;病程为(27.37±11.53)d (0~52 d);地区分布,苏州84例(53.8%),无锡20例 (12.8%),连云港 52 例(33.3%);病程分布,病程 < 14 d为发病早中期,23例(14.7%),病程≥14 d为发病后期,133例(85.3%)。

  • 微流控法检测的 IgG 的 S/CO 值为(24.15 ± 33.37)(0.51~214.03),微流控法检测的 IgM 的 S/CO 值为(1.65±1.33)(0.13~9.76)。以5个临床分型为X 轴,IgG和IgM的S/CO值为Y轴,绘制散点图(图1)。

  • COVID⁃19发病早中期,基于微流控法的IgG抗体S/CO值为18.8±7.6,而发病后期为25.1±2.9,差异有统计学意义(Z =-1.98,P =0.048);根据性别、年龄、临床分型分组计算,仅18~<45岁年龄组不同病程间IgG抗体S/CO值差异有统计学意义(Z =-2.84,P = 0.005),余根据性别、年龄、临床分型分组比较,不同病程间 IgG 抗体 S/CO 值差异均无统计学意义(表2)。COVID⁃19发病早中期IgG阳性21例(91.3%), COVID⁃19发病后期IgG阳性为133例(100.0%),差异有统计学意义(χ2 病程=11.72,P =0.001);且性别、年龄、临床分型分组比较,不同病程间IgG抗体阳性率差异有统计学意义(表3)。

  • COVID⁃19 发病早中期,基于微流控法的新冠 IgM抗体S/CO值为1.7±0.2,发病晚期为1.6±0.1,差异无统计学意义(Z =1.08,P =0.281);性别、年龄、临床分型分组比较差异无统计学意义(表4)。根据病程分组比较,发病早中期 IgM 阳性 19 例 (82.6%),发病后期IgM阳性82例(61.7%),IgM抗体阳性率差异无统计学意义(χ2 =3.77,P =0.052)。根据流行病学信息分组中,仅女性不同病程IgM抗体阳性率差异有统计学意义(χ2 =4.93,P =0.026),余年龄、临床分型分组比较,IgM抗体阳性率差异无统计学意义(表5)。

  • 图1 不同临床分型的COVID⁃19患者IgG、IgM抗体 S/CO值分布

  • Figure1 Distribution of the S/CO values of IgG and IgM antibody for different clinical types of COVID⁃19 cases

  • 表2 基于微流控法的COVID⁃19患者不同发病阶段IgG抗体S/CO值比较

  • Table2 Comparison of IgG antibody S/CO values between different phases after onset among COVID⁃19 cases based on the microfluidic method

  • 表3 基于微流控法的COVID⁃19患者不同发病阶段IgG抗体阳性率比较

  • Table3 Comparison of IgG antibody positive rates between different phases after onset among COVID⁃19 cases based on the microfluidic method

  • 2 讨论

  • 目前COVID⁃19确诊的主要手段为核酸检测[10],然而核酸检测仪器设备昂贵、采样人员暴露风险大,采样时间及手法、实验室检测条件等限制容易出现假阴性[11]。且有部分病例,尤其是疫苗接种后又免疫突破的病例,核酸检测常常不能有效检出[12]。因此,COVID⁃19特异性抗体检测不可或缺。

  • COVID⁃19抗体定量检测在监测与辅助诊断方面很有意义。一方面,了解 COVID⁃19 患者不同病程抗体滴度变化规律,结合其他症状体征等可能让研究者了解SARS⁃CoV⁃2的更多信息;另一方面,掌握上述规律后,通过检测 COVID⁃19 患者的血清滴度可以提示此患者的感染时间、病程甚至预后等信息。如近期化学发光法血清检测数据提示多数疫苗接种者IgG滴度较低,而免疫突破的COVID⁃19感染者IgG滴度较高,提示接种疫苗后IgG滴度高的被检测者感染 SARS ⁃CoV ⁃2 可能性大(结果另文发表)。此外,定量化的抗体检测可直观体现COVID⁃ 19 患者体内抗体水平,可以辅助诊断 SARS⁃CoV⁃2 感染,可以帮助判断患者病程进展,能监测治疗效果及评价预后[13-14]

  • 目前,SARS⁃CoV⁃2抗体常用检测方法包括胶体金法(CGI)、酶联免疫吸附法(ELISA)、化学发光 (CLIA)等[14],现有 SARS⁃CoV⁃2 抗体定量检测方法主要为化学发光法,但操作复杂,需大型仪器设备,检测时间长(至少2~3 h)。

  • 微流控法具有需检测样品量小、仪器体积小、能耗低与检测快(数分钟)等特点[15],是一个新兴的开放式检测平台,应用范围非常广泛,核酸和蛋白质都可以作为目标物质,且蛋白质检测更为成熟[16]。现关于微流控技术的基础研究越来越全面,如抗体固定方法[17]、通道拓扑结构改善[9]、多参数检测研究[15] 等。微流控快速筛查现正式列为前列腺癌筛查的方法之一[18],还用于检测多种呼吸道病原[19]、肝炎病毒[20] 等病原体,用于临床诊断缺铁性贫血[21]、检测肌钙蛋白确诊心肌损伤[22]、膀胱癌细胞捕获[23],以及在农产品中检测赭曲霉毒素[24] 等。微流控技术在微型化、多元化、自动化方面不断进展,尤其在生命科学领域发展迅猛,有望成为生命科学的主要研究分析手段之一[25]

  • 表4 基于微流控法的COVID⁃19患者不同发病阶段IgM抗体S/CO值比较

  • Table4 Comparison of IgM antibody S/CO values between different phases after onset among COVID⁃19 cases based on the microfluidic method

  • 表5 基于微流控法的COVID⁃19患者不同发病阶段IgM抗体阳性率比较

  • Table5 Comparison of IgM antibody positive rates between different phases after onset among COVID⁃19 cases based on the microfluidic method

  • 目前微流控法尚未商品化应用于SARS⁃CoV⁃2 检测。因此,本研究评价了 SARS⁃CoV⁃2 特异性抗体微流控定量检测新方法,期望可以发现一种 SARS⁃CoV⁃2抗体快速定量检测方法,更好适用于现场即时检测(point⁃of⁃care testing,POCT)与临床[12]

  • POCT主要指用便携式分析仪器在采样现场立即得到检测结果的检测方式,以实现快速便捷的临床现场检验为主要目标,具有检测时效性较高、综合成本较低、不依赖专业设备等优势,现已广泛应用于检验检疫、临床监护、家庭保健等领域[16]。POCT 可以使临床诊断和治疗质量得到提升[26]。微流控法所需样本体积小、方便快捷,适用于POCT[27]

  • 本研究中,鉴于 COVID⁃19 确诊样本均采集于 2020年1—2月,COVID⁃19疫情初始,患者样本不存在疫苗接种以及多次不同亚型SARS⁃CoV⁃2病毒感染干扰,检测结果阳性即可判定为 SARS⁃CoV⁃2 感染。由于RT⁃PCR 敏感性与特异性均较高,是目前判断受试者是否感染SARS⁃CoV⁃2的标准[28],SARS⁃ CoV⁃2抗体检测也多以此为检测评价标准[28-30]。本研究中RT⁃PCR与微流控IgG、胶体金IgG检测结果一致性良好。微流控SARS⁃CoV⁃2血清抗体定量检测 IgG 的 S/CO 值范围较大 0.51~214.03(24.15 ± 33.37),IgM范围0.13~9.76(1.65±1.33),但由于病程早期与中期样本的数量较少,仅IgG抗体S/CO值在 COVID⁃19发病早中期比较差异有统计学意义,余分组比较差异均无统计学意义。加大样本量以及免疫突破病例的检测可对COVID⁃19抗体消长规律进行更深入的研究。

  • 综上,微流控法检测快速方便,应用范围越来越广[31],可在判定 IgG、IgM 抗体阳性的同时测定抗体浓度滴度,是一种新型抗体滴度检测方法。本研究基于微流控方法定量检测了 SARS⁃ CoV⁃2 感染者的血清抗体,检测结果准确,但仍需进一步扩大样本量,多人群开展验证,以得到更大范围的应用。

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