近年来，心源性猝死（sudden cardiac death， SCD）的发病率显著增加并呈年轻化趋势，严重威胁着人类的生命健康。SCD本质上表现为心脏电传导功能紊乱，多发生于有心脏基础病变的心肌病患者，如心肌肥厚、冠心病、心肌梗死等。这些疾病造成患者的心肌细胞发生不同程度的损伤，是猝死发生的物质基础^[1-2]。了解心肌细胞损伤的诱因并探讨其相应的分子机制，对于心肌疾病的精准诊疗以及预防SCD猝死具有重要意义。

神经肽 Y（neuropeptide Y，NPY）是 1 种由 36 个氨基酸组成的小分子多肽，是心肌组织中含量最丰富的神经肽类物质。心肌梗死、心衰等发生时，血清和心肌组织中NPY表达均显著增加^[3]。然而NPY 在心肌细胞中的功能目前没有统一的认识。研究发现NPY高表达对心血管系统具有损伤作用，可进一步引发高血压和心肌肥厚^[4]；敲除NPY可有效缓解缺血诱导的心肌细胞凋亡和功能障碍^[5]。然而也有研究认为，缺乏NPY的急性心肌缺血小鼠表现出更严重的进行性心肌炎症和心肌纤维化^[6]，提示NPY 高表达可能是机体的一种反馈保护机制。因此深入探讨不同状态下 NPY 对心肌细胞的作用及相应机制具有重要意义。

目前已发现的NPY作用受体有8种亚型。激活细胞表面不同亚型的受体可产生不同的生物学效应。Y1受体是心肌细胞表面主要的表达亚型。高血压大鼠心肌组织Y1受体表达增加，参与调节心肌细胞的能量生成^[7]。NPY 通过Y1受体可促进内皮细胞和血管平滑肌细胞的增殖和迁移。然而NPY/ Y1受体信号转导是否参与β肾上腺素受体持续激活诱导心肌损伤目前尚未可知。经典 Wnt/β⁃catenin 信号通路在细胞生长、增殖、迁移以及凋亡等过程中扮演重要角色。糖尿病性心肌病中，心肌组织糖原合成酶激酶 3β（glycogen synthesis kinase3β，GSK3β） mRNA下降，p⁃GSK3β增加，诱导细胞质中β⁃catenin 入核，启动下游靶基因表达，导致细胞凋亡^[8]。NPY 是否影响心肌细胞中经典Wnt信号通路未见相关报道。基于此，本研究建立异丙肾上腺素（isoprena⁃ line，ISO）诱导的小鼠心肌损伤模型和Y1受体特异性激活剂[Leu31，Pro34]⁃NPY 诱导的 H9C2 细胞模型，探讨 NPY/Y1 受体信号转导是否通过β⁃catenin 信号通路诱导心肌细胞损伤。

1 材料和方法

1.1 材料

C57BL/6J小鼠（6~8周龄）购自南京凯斯佳生物科技有限公司，动物实验符合3R原则（伦理批文编号：XMLL⁃2023⁃036），饲养于江苏医药职业学院实验动物中心，恒温（23 ± 1）℃，人工照明（白天/黑夜各12 h）。大鼠心肌细胞H9C2（上海中国科学院细胞库）；L⁃DMEM、胎牛血清、0.25%胰酶（Hyclone 公司，美国）；ISO（HY ⁃ B0468，Sigma 公司，美国）； [Leu31，Pro34]⁃NPY（HY⁃P1323）、Y1受体特异性拮抗剂 BIBO3304（HY⁃107725）（MCE 公司，美国）； β⁃catenin 特异性抑制剂 ICG001（SF6827，杭州碧云天公司）；NPY 抗体[Neuropeptide Y（D7Y5A）， 11976]、磷酸化糖原合成酶激酶⁃3β（phospho⁃glyco⁃ gen synthesis kinase3β，p ⁃ GSK3β）抗体[phospho ⁃ GSK3β（Ser9）（D85E12），5558]、总糖原合成酶激酶⁃ 3β（total glycogen synthesis kinase3β，t⁃GSK3β）抗体 [GSK3β（D5C5Z），12456]、active⁃β⁃catenin抗体[non ⁃phosph（Active）β⁃catenin（Ser45）（D2U8Y），19807] （CST 公司，美国）；GAPDH 抗体（PB1034）、HRP 标记的抗兔 IgG（PA2202）（Proteinbio 公司，美国）； Actin ⁃ Tracker Red ⁃ 555（微丝红色荧光探针） （C2203S，杭州碧云天公司）；AF488标记的抗兔IgG （AB0141，Abways公司，美国）；ECL显影液（Biosharp 公司，美国）；TRIzol试剂（Invitrogen公司，美国）；反转录试剂盒和qPCR mix（Vazyme公司，美国）；CCK⁃8试剂（Glpbio公司，美国）。

1.2 方法

1.2.1 实验动物分组

4 周龄雄性小鼠随机分成4组，包括对照组、ISO 组、BIBO3304+ISO组、BIBO3304组，每组10只。对照组皮下注射生理盐水；ISO组皮下注射20 mg/（kg·d） ISO；BIBO3304+ ISO 组腹腔注射 0.1 mg/（kg · d） BIBO3304，30 min 后皮下注射 20 mg/（kg·d）ISO； BIBO3304 组腹腔注射 0.1 mg/（kg·d）BIBO3304，所有组连续给药14 d。

1.2.2 HE和Masson染色

收集各组小鼠心肌组织置于4%多聚甲醛中固定过夜，用梯度乙醇进行脱水处理、石蜡包埋、切片 （5 μm），最后置70℃烘箱烤片2.5 h，HE染色观察心肌纤维形态结构；Masson染色观察心肌纤维化程度。

1.2.3 细胞培养

H9C2细胞接种于6孔培养板上，用含10%胎牛血清的L⁃DMEM培养24 h后，无血清L⁃DMEM饥饿处理过夜，用不同浓度（0、10、100 nmol/L）[Leu31， Pro34]⁃NPY处理细胞24 h或48 h后进行相应的实验。

1.2.4 荧光定量PCR

TRIzol法提取细胞样品中的总RNA，采用反转录试剂合成 cDNA。Real⁃time RT⁃PCR 检测心肌组织中 NPY 和细胞中肥大基因心房钠尿肽（atrial na⁃ triuretic peptide，ANP）、β⁃肌球蛋白重链（β⁃myosin heavy chain，β⁃MHC）mRNA表达，以GAPDH作为内参。具体引物序列见表1。

1.2.5 Western blot检测蛋白表达

心肌组织或细胞样品中加入 PIPA 裂解液（含 1 mmol/L 蛋白酶抑制剂和 1 mmol/L 磷酸化酶抑制剂）提取心肌或细胞的总蛋白。蛋白定量后与上样缓冲液混合，金属浴煮沸5 min变性，之后进行SDS⁃ PAGE电泳分离。快速湿转将蛋白转移到PVDF膜， 5%脱脂牛奶室温封闭1 h，加入一抗（NPY，1∶1 000 稀释；p⁃GSK3β，1∶1 000 稀释；t⁃GSK3β，1∶1 000 稀释；active β⁃catenin，1∶1 000稀释；GAPDH，1∶5 000稀释），4℃摇床孵育过夜。TBST 清洗 3 次，每次 10 min。之后加入HRP⁃标记的二抗（1∶5 000稀释） 室温孵育2 h，TBST 清洗3次，每次10 min。ECL 显影，Image J软件对蛋白灰度值进行定量分析。

1.2.6 CCK⁃8法检测H9C2细胞活力

H9C2 细胞以 6×10⁴ 个/mL 接种至 96 孔培养板上，24 h后细胞饥饿过夜，分别加入不同浓度（0、10、 100 nmol/L）的[Leu31，Pro34]⁃NPY 处理细胞 48 h。之后向每孔中加入10 μL CCK⁃8工作液，37℃培养箱内孵育2 h。用酶标仪检测450 nm处每孔的吸光度值，并计算心肌细胞活力。

1.2.7 免疫荧光染色

H9C2 细胞以 1×10⁵ 个/mL 密度接种至 24 孔板中，24 h 后细胞饥饿过夜。Y1 受体特异性拮抗剂 BIBO3304（1 μmol/L）或β⁃catenin特异性抑制剂ICG001 （1 μmol/L）预处理细胞 30 min 后，用 100 nmol/L [Leu31，Pro34]⁃NPY 处理细胞。4%多聚甲醛固定细胞，PBS清洗3次。0.2% TritonX⁃100处理30 min， PBS 清洗 3 次。3%BSA 封闭细胞 60 min，PBS 清洗3 次。细胞骨架染色：加入 Actin⁃Tracker Red⁃555 4℃过夜后滴加 DAPI 染细胞核 10 min，PBS 清洗 3 次，荧光显微镜观察拍照。β⁃catenin 入核检测：孵育β⁃catenin 一抗 4°C 过夜，PBS 清洗 3 次后加入 AF488 标记的抗兔二抗（1∶100 稀释），室温下孵育 2 h；滴加DAPI染细胞核10 min，PBS清洗3次，荧光显微镜观察拍照。采用 Image J 软件对细胞面积进行定量分析。

1.3 统计学方法

数据结果采用GraphPad Prism 7软件进行处理。符合正态分布的计量资料以均数±标准差（$\stackrel{-}{x}\pm s$）表示。两组间数据比较采用独立样本t检验；多组间数据比较采用单因素方差分析。两两比较采用SNK⁃q 检验，P <0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 ISO组小鼠心肌组织NPY水平增加

与对照组相比，ISO组小鼠皮下注射20 mg/（kg·d） ISO 14 d 后，心肌组织中 NPY mRNA 和蛋白表达显著增加，差异有统计学意义（P <0.05，图1）。

2.2 BIBO3304缓解ISO诱导的心肌损伤和纤维化

对照组小鼠皮下注射生理盐水2周后，心肌纤维没有出现明显损伤，心肌细胞排列整齐，纤维结构清晰，无明显纤维化。与对照组相比，ISO 组小鼠心肌组织 HE 染色出现明显的心肌细胞坏死、心肌细胞溶解；Masson 染色显示心肌组织胶原沉积明显增加，并向周围间质延伸。与 ISO 组相比， BIBO3304+ISO组心肌细胞损伤有所缓解，心肌组织胶原沉积明显减少。与对照组相比，BIBO3304组小鼠心肌纤维结构和心肌胶原沉积程度无明显改变 （图2A、B）。与对照组相比，ISO组小鼠心肌肥大基因 ANP、β⁃MHC mRNA 表达显著增加；与 ISO 组相比，BIBO3304+ISO组小鼠ANP、β⁃MHC mRNA表达降低（P <0.01）。与对照组相比，BIBO3304 组小鼠 ANP、β⁃MHC mRNA表达无明显变化（图2C、D）。

2.3 [Leu31，Pro34]⁃NPY诱导H9C2心肌细胞损伤

为探索NPY/Y1受体对心肌细胞的直接生物学效应，用不同浓度（0、10、100 nmol/L）的Y1受体特异性激活剂[Leu31，Pro34]⁃NPY处理H9C2细胞24 h，定量 PCR 结果显示心肌肥大基因 ANP、β⁃ MHC mRNA表达显著增加（P <0.01，图3A、B）。CCK⁃8 检测发现，[Leu31，Pro34]⁃NPY处理H9C2细胞48 h 后细胞活力明显下降（P <0.01），呈现剂量依赖效应（图3C）。

2.4 BIBO3304 缓解 ISO 诱导激活的β⁃catenin 信号通路

与对照组相比，ISO组p⁃GSK3β、active β⁃catenin 表达增加，p⁃GSK3β/t⁃GSK3β比值增加，提示β⁃catenin 信号通路激活。与 ISO 组相比，BIBO3304+ISO组 active β⁃catenin 和 p⁃GSK3β/t⁃GSK3β表达显著下降 （P <0.05）。BIBO3304 组与对照组相比，active β⁃ catenin和p⁃GSK3β/t⁃GSK3β表达差异无统计学意义 （图4）。

2.5 [Leu31，Pro34]⁃NPY激活β⁃catenin信号通路

与对照组相比，Y1受体激动剂[Leu31，Pro34]⁃ NPY 增加 active β⁃catenin、p⁃GSK3β表达，active β⁃ catenin/GAPDH、p ⁃ GSK3β/t ⁃ GSK3β比值增加（P <0.05，图5A~C），提示β⁃catenin信号通路激活。与对照组相比，[Leu31，Pro34]⁃NPY促进细胞核β⁃catenin 增加；与[Leu31，Pro34]⁃NPY 组相比，BIBO3304 抑制细胞核β⁃catenin积累（图5D）。

2.6 抑制β⁃catenin 信号通路缓解[Leu31，Pro34]⁃ NPY诱导的H9C2细胞损伤

与[Leu31，Pro34]⁃NPY 组相比，ICG001 显著抑制[Leu31，Pro34]⁃NPY 诱导的 H9C2 细胞心肌肥大基因 ANP、β⁃MHC mRNA 表达上升（P <0.05）和细胞面积增加（P <0.01），缓解心肌细胞活力下降 （P <0.01，图6）。

3 讨论

本研究构建 ISO 诱导的小鼠心肌损伤模型和 [Leu31，Pro34]⁃NPY 诱导的 H9C2 细胞模型，探索NPY/Y1 受体信号转导在心肌损伤中的作用及机制。结果显示：ISO 诱导小鼠心肌组织 NPY mRNA 和蛋白表达增加、心肌细胞损伤和心肌纤维化，特异性拮抗Y1受体可有效缓解ISO诱导的心肌损伤、纤维化以及心肌肥大基因表达；体外实验证实特异性激活Y1受体增加心肌肥大基因表达和心肌细胞面积，降低心肌细胞活力。体内外实验均表明NPY 通过 Y1 受体转导可促进心肌细胞 GSK3β磷酸化，增加细胞内active β⁃catenin表达；拮抗Y1受体信号转导可有效抑制 ISO 诱导的心肌组织 p⁃GSK3β和 active β⁃catenin表达增加。[Leu31，Pro34]⁃NPY促进 H9C2细胞核β⁃catenin积累；BIBO3304抑制[Leu31， Pro34]⁃NPY诱导的细胞核β⁃catenin表达。β⁃catenin 转录激活的特异性抑制剂ICG001显著缓解[Leu31， Pro34]⁃NPY诱导的心肌细胞肥大和细胞活力下降。

NPY 是心肌组织中含量最丰富的神经肽类激素，参与多种心血管疾病如高血压、应激性心肌病、糖尿病性心肌病等的发生发展^[9-10]。在生理或病理状态下，机体交感神经兴奋增强使得神经末梢NPY 分泌和释放增加，血清NPY 水平显著升高，进一步可促进血管收缩和心肌重构。此外，心肌内皮细胞、血小板、巨噬细胞等也可以合成和释放 NPY。一般认为，NPY在心肌组织中可发挥短时和长时两种效应。短时效应是NPY调节钙离子信号，影响心肌细胞兴奋收缩偶联；长时效应则是NPY作为一种细胞因子，调节心肌细胞肥大和凋亡等。前期研究发现，多种心血管疾病发生时血清和心肌组织中 NPY水平均显著增加。在体外培养的心肌细胞中， H₂O₂可直接诱导细胞内NPY表达增加，下调心肌细胞中NPY表达，显著缓解氧化应激导致的心肌细胞凋亡^[5]。本研究通过皮下注射ISO构建小鼠心肌损伤模型，14 d后发现心肌组织NPY mRNA和蛋白的表达显著上升，提示在β肾上腺素受体持续激活诱导的心肌损伤过程中，NPY 的表达同样增加，与之前的研究结果一致。

NPY通过与细胞表面的Y受体特异性结合发挥生物学效应。NPY 及其受体的遗传多态性与心血管疾病的发病发展具有显著相关性^[11-12]。然而关于 NPY 在心肌组织中的功能目前仍存在较大争议。研究发现，血清 NPY 水平与患者心肌肥厚程度呈正相关，是影响心力衰竭患者1年生存率的独立因素^[13-14]；NPY 敲除后，心肌缺血导致的心肌功能障碍、细胞凋亡等可有效缓解^[5]，提示NPY/Y受体介导了心肌肥大、细胞损伤和心肌功能障碍的发生发展。然而也有研究认为 NPY 增强巨噬细胞 p62/ SQSTM1依赖性自噬和核因子E2相关因子2（nuclear factor⁃erythroid 2 related factor 2，NRF2）介导的抗氧化信号通路^[15]。此外NPY促进血管生成、减轻小鼠急性心梗后的心肌重塑、抑制心肌炎症和纤维化^[6]，提示 NPY 可能对心肌损伤有抑制作用。因此深入探讨心肌组织中 NPY/Y 受体信号转导对心血管疾病的预防和精准诊疗具有重要意义。

目前已发现8种亚型的NPY作用受体，除了受体Y3外，其余亚型的受体均为G蛋白偶联受体。激活不同亚型的受体可以产生不同的生物学效应。 Y1受体是心肌细胞表达的主要亚型。短时效应方面，Y1受体激活后增加心肌细胞的正性收缩。阻断抑制NPY/Y1受体信号转导被认为是β受体阻滞剂治疗室性心律失常的一种有效辅助方式^[16]。长时效应方面，NPY通过Y1受体可促进内皮细胞和血管平滑肌细胞的增殖和迁移^[17]。在高血压大鼠模型中，心肌组织Y1受体mRNA和蛋白表达增加，参与调节心肌细胞的能量生成。NPY/Y1受体信号转导还介导了血管收缩效应和肺高血压^[9，18]。本研究发现Y1受体特异性拮抗剂BIBO3304有效缓解了ISO诱导的小鼠心肌细胞排列紊乱、心肌纤维化及心肌肥大基因表达，提示NPY/Y1受体介导了ISO诱导的小鼠心肌损伤。此外，Y1受体特异性的激活剂[Leu31，Pro34]⁃ NPY 刺激 H9C2 细胞后，小鼠心肌细胞肥大基因 ANP、β⁃MHC mRNA表达增加，细胞面积增大，细胞活力显著下降，进一步证实了 NPY/Y1 受体信号转导对心肌细胞具有直接损伤效应。

β⁃catenin是经典Wnt信号通路的关键下游效应因子，参与心肌肥大、纤维化、心衰等多个过程的调节^[19-20]。当 Wnt 信号通路激活后，GSK3β自身磷酸化水平增加，抑制 GSK3β对β⁃catenin 的磷酸化降解，最终导致细胞质内游离β⁃catenin 蛋白表达增加，β⁃catenin 转入细胞核，作为核转录辅因子调节下游靶基因的表达。GSK3β活性降低或 GSK3β缺陷型的小鼠心脏细胞分裂紊乱，可导致扩张性心肌病的发生^[21]。此外，在心肌肥厚的大鼠心脏和肾脏中均发现了Wnt/β⁃catenin信号通路的激活，而阻断该信号通路可有效改善这两个组织的损伤^[22]。本研究中在ISO组小鼠心肌组织和[Leu31，Pro34]⁃NPY处理的 H9C2 细胞中均发现了 p⁃GSK3β 和 active⁃ β⁃catenin 的高表达；BIBO3304 可抑制 ISO 诱导的 β⁃catenin 信号通路的激活；BIBO3304抑制[Leu31， Pro34]⁃NPY 诱导的β⁃catenin 入核；ICG001 有效改善[Leu31，Pro34]⁃NPY 诱导的心肌细胞肥大和细胞活力下降，提示 NPY/Y1 受体信号转导可能通过 β⁃catenin 信号通路介导了心肌细胞损伤和纤维化。前期研究发现，在压力超负荷引起的小鼠心肌肥厚模型中，心肌组织Wnt配体Wnt1、Wnt3a表达增加，同时β⁃catenin 水平上调，与心肌损伤和纤维化程度一致^[22]。在心肌肥大和损伤过程中，高表达的 NPY是否通过调节心肌细胞中Wnt配体的表达亚型和表达水平影响GSK3β的磷酸化状态，导致Wnt信号通路激活，尚需进一步研究。

综上所述，本研究认为在β肾上腺素受体持续激活诱导的心肌损伤过程中，NPY 合成和释放增加，其通过与Y1受体结合激活β⁃catenin信号通路； 增加的β⁃catenin转入细胞核，调节下游靶基因的表达，介导了心肌细胞损伤和纤维化（图7）。本研究只观察了NPY/Y1受体信号转导对心肌细胞中经典 Wnt信号通路核心因子β⁃catenin表达的影响，后续研究将基于NPY/Y1信号转导影响β⁃catenin的机制做进一步探讨，以期为以NPY为靶点的心血管疾病的精准预防和临床诊疗提供理论依据。

参考文献