Page 116 - 南京医科大学学报自然科学版
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第43卷第5期
·698 · 南 京 医 科 大 学 学 报 2023年5月
120.26,117.39,113.54,105.24,42.96;ESI⁃MS m/z: 将化合物28(0.35 g,1 mmol)加入到乙醇(7 mL)
306.1[M⁃H]。 溶液中,分批次加入硼氢化钠(0.19 g,5 mmol),溶液
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1.2.2.7 化合物27a~27b的合成 由浑浊变得澄清,TLC 检测反应,反应结束后,加入
将化合物26a(1.03 g,5 mmol)和4⁃氨基⁃2⁃羟基 2 mol/L 盐酸溶液调节 pH 至 7 左右,抽滤,取滤液,
苯甲酸(0.77 g,5 mmol)溶于 20 mL 乙醇溶液中,升 加入超纯水(15 mL),有白色固体析出,抽滤,用大
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温至 85 C,并向溶液中加入少量的甲酸,搅拌 5 h 量超纯水冲洗滤饼,干燥滤饼后,将滤饼加入到甲
后,冷却到室温,有黄色固体析出,抽滤,用少量乙醇 醇(10 mL)中,在 0 C 下加入 2 mol/L 氢氧化钠溶液
o
冲洗滤饼,干燥滤饼后,将滤饼加入到乙醇(7 mL) (7 mL),升温至 45 C 搅拌 3 h。TLC 检测反应,反
o
溶液中,分批次加入硼氢化钠(0.19 g,5 mmol),溶 应结束后,将甲醇蒸除后,用 1 mol/L 的稀盐酸调节
液由浑浊变得澄清,TLC 检测反应,反应结束后, pH 至 5 左右,有白色固体析出,抽滤,干燥得目标
加入 2 mol/L 盐酸溶液调节 pH 至 5 左右,抽滤,取 化合物 29。
滤液,加入超纯水(15 mL),有棕黄色固体析出, 4⁃((3,5⁃二氯⁃2⁃羟基苄基)(甲基)氨基)⁃2⁃羟
抽滤,用大量超纯水冲洗滤饼,干燥后得到化合 基 苯 甲 酸(29):白 色 固 体 ,收 率 83% 。 m.p. 76~
物 27a。 78 ℃;H NMR(400 MHz,Chloroform⁃ d)δ 9.91(s,
1
按相同的方法,以化合物26b为原料,得到相应 1H),7.70(d,J=7.5 Hz,1H),7.30(d,J=1.4 Hz,1H),
的产物化合物27b。 7.09(dt,J=1.9,1.1 Hz,1H),6.37(dd,J=7.5,1.6 Hz,
4⁃((1⁃(3,5⁃二氯⁃2⁃羟基苯基)乙基)氨基)⁃2⁃羟 1H),6.30(d,J=1.5 Hz,1H),4.61(d,J=0.9 Hz,2H),
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基苯甲酸(27a):棕黄色固体,产率 79%。m.p. 62~ 3.05(s,3H); C NMR(101 MHz,Chloroform ⁃ d)δ
64 ℃;H NMR(400 MHz,DMSO⁃d6 )δ 9.70(s,1H), 171.73,162.99,151.91,150.41,131.47,129.36,
1
8.87(s,1H),7.28(d,J=2.6 Hz,1H),7.15(d,J=2.6 128.20,127.89,127.44,121.72,105.89,102.18,
Hz,1H),6.73(t,J=8.0 Hz,1H),6.04(d,J=7.0 Hz, 101.28,51.14,38.67;ESI⁃MS m/z:340.1[M⁃H]。
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1H),5.90(dt,J=8.0,2.0 Hz,2H),5.82(t,J=2.1 Hz, 1.2.3 化合物对人神经母细胞瘤细胞(SH⁃SY5Y)抗
1H),4.66(t,J=6.6 Hz,1H),1.30(d,J=6.7 Hz,3H); 增殖实验
C NMR(101 MHz,DMSO⁃d6 )δ 158.6,149.6,149.2, 细胞毒性通过 CCK⁃8 细胞增殖检测法进行检
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137.7,130.0,127.2,125.1,124.1,122.2,104.8, 测,阴性组、阳性组、待测样品组的待测物均先溶于
104.4,100.3,47.4,22.8;ESI⁃MS m/z:342.2[M+H]。 DMSO(终浓度不超过 0.5%),用生理盐水稀释至终
+
4⁃((1⁃(3,5⁃二氯⁃2⁃羟基苯基)丙基)氨基)⁃2⁃羟 浓度为1 mmol/L。将细胞消化、计数,配制细胞悬液
4
基苯甲酸(27b):黄褐色固体,产率 56%。m.p. 76~ 7×10 个/mL,96孔细胞培养板中每孔加入100 μL细
1
78 ℃;H NMR(400 MHz,Chloroform⁃d)δ 7.68(d,J= 胞悬液;将96孔细胞培养板置于37 ℃、5% CO2培养
7.5 Hz,1H),7.30(d,J=1.4 Hz,1H),7.26(t,J=1.2 Hz, 箱中培养24 h。
1H),6.54(d,J=11.5 Hz,1H),6.29(dd,J=7.4,1.5 Hz, 用 培 养 基 稀 释 药 物 至 所 需 工 作 液 浓 度
1H),6.03(d,J=1.4 Hz,1H),5.01(dtd,J=11.5,7.0, (25 μ mol/L),每孔加入 100 μL 相应的含药培养
1.0 Hz,1H),2.04⁃1.86(m,2H),0.95(t,J=8.0 Hz, 基,同时设立阴性对照组;将 96 孔细胞培养板置于
3H); C NMR(101 MHz,Chloroform ⁃ d)δ 171.64, 37 ℃,5% CO2培养箱中培养24 h,再将96孔板进行
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163.41,151.78,151.56,131.70,129.68,129.35, CCK⁃8染色,λ=450 nm,测定吸光度。代入公式:抑制
128.90,128.40,121.29,105.74,103.06,100.65, 率=(D 阴性对照⁃D 实验 )/D 阴性对照×100% 计算抑制率。
55.56,28.13,10.58;ESI⁃MS m/z:356.2[M+H]。 1.2.4 化合物对人神经母细胞瘤细胞(SH⁃SY5Y)保
+
1.2.2.8 化合物29的合成 护活性测试
将化合物18b(0.34 g,1 mmol)溶于3 mL乙醇溶 谷氨酸诱导损伤的 SH⁃SY5Y 细胞的保护作用
液中,加入甲醛水溶液1.5 mL,常温搅拌5 h,TLC检 通过 LDH 试剂盒进行检测。阴性组、阳性组、待测
测反应,反应结束后,有白色固体析出,抽滤,用少 样品组的待测物均先溶于 DMSO(终浓度不超过
量乙醇冲洗滤饼,经硅胶柱色谱(展开剂∶石油醚∶ 0.5%),用生理盐水稀释至终浓度为 1 mmol/L。将
乙酸乙酯= 10∶1)纯化得到化合物28直接用于下一 细胞消化、计数,配制细胞悬液 1.4×10 个/mL,96 孔
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步反应。 细胞培养板中每孔加入50 μL细胞悬液,将96孔细

