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小泛素相关修饰物(small ubiquitin ⁃ related modifier,SUMO)修饰是蛋白质翻译后修饰的一种,其能够调控蛋白的相互作用、活性及亚细胞定位[1],从而调节多种细胞进程。与泛素化过程类似,SUMO 化修饰是一个动态可逆的过程,SUMO 前体在泛素样蛋白加工酶(ubiquitin⁃like protein⁃specific protease,ULP)或SUMO特异性蛋白酶(sentrin⁃specific protease,SENP)的加工下产生 SUMO⁃GG,由 SUMO E1 酶(Aos1 ⁃ Uba2)激活,转移到 SUMO E2 酶 (Ubc9),并通过 SUMO E3 连接酶(PIAS)与底物结合,最后,修饰底物可通过ULP/SENP发生去SUMO 化,使蛋白质的 SUMO 化和去 SUMO 化处于动态平衡状态[2-3]。
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在哺乳动物中,去 SUMO 化酶 SENP 共有 6 种, SENP1 作为去 SUMO 化酶之一,拥有广泛的特异性底物,这些底物参与多种细胞生物学过程,如信号转导、细胞增殖、凋亡等[4-6]。近年来,越来越多的研究发现 SENP1 在多种肿瘤中呈现出异常的高表达[7-10],促进肿瘤的发生发展,如在乳腺癌中,高表达的 SENP1 通过调控细胞周期素依赖性激酶 p21、p27 以及基质金属蛋白酶 9 的表达促进肿瘤细胞的增殖、迁移和侵袭。由于 SENP 在肿瘤中的重要作用,其已被确定为肿瘤治疗的分子靶标[11]。
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SPOP(speckle type BTB/POZ protein)是泛素连接酶 E3 家族成员 Cul3 结合底物的接头蛋白,介导许多核蛋白的泛素化修饰,导致蛋白降解,从而调控细胞的多种生理过程[12]。已有研究证实,SPOP的缺失或突变与多种肿瘤密切相关,包括前列腺癌、乳腺癌、结直肠癌等[13-14]。其中受SPOP影响最为显著的是肾透明细胞癌(clear cell renal cell carcinoma, ccRCC)。SPOP蛋白在正常肾脏组织中表达量非常低,但在 99%的 ccRCC 组织中却大量表达,表明 SPOP蛋白是一个潜在的ccRCC分子标志物。由于 SPOP在ccRCC中的重要作用,其已被确定为ccRCC 治疗的新靶点。前人根据SPOP所识别底物蛋白的晶体结构特点,获得了能够与 SPOP 蛋白结合的小分子化合物,并在体内和体外验证了其作用[15-16]。 ccRCC中SPOP的相关研究虽然很多,但其在ccRCC 中特异性高表达的机制还未见报道。
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2022 年 Lee 等[17] 发现,去 SUMO 化酶 SENP1 在 ccRCC中存在异常的高表达。本课题组通过实验发现,在 Senp1 敲除的小鼠胚胎成纤维细胞(murine embryonic fibroblasts,MEFs)中,Spop 的蛋白水平有所下降。因此,本研究拟探讨去 SUMO 化酶 Senp1 是否参与Spop的蛋白水平调控,并在ccRCC中初步探索 SENP1 与 SPOP 之间的相关性,以期为 ccRCC 的治疗提供新的思路。
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1 材料和方法
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1.1 材料
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WT 和 Senp1-/- MEFs 由上海交通大学医学院程金科教授馈赠;肾上皮细胞 HK⁃2 和 ccRCC 细胞 Caki⁃1、Caki⁃2、A498、786⁃O 均购于武汉普诺赛公司;DMEM 培养基、MEM 培养基、RPMI⁃1640 培养基、McCoy’s 5A 培养基、胎牛血清、0.25%EDTA⁃胰蛋白酶(Gibco 公司,美国);青霉素/链霉素(苏州新赛美公司);RNAiso Plus 细胞总 RNA 提取试剂 (TaKaRa公司,日本);HiScriptⅡ Q⁃RT SuperMix for qPCR(gDNA wiper)逆转录试剂盒及 AceQ qPCR SYBR Green Master Mix 荧光定量 PCR 试剂盒(南京诺唯赞公司);Duolink® PLA试剂盒(Sigma公司,美国);转染质粒试剂 PlusTM Reagent(Thermo 公司,美国);Lamin B1、α⁃Tubulin、Spop、HA 抗体(武汉三鹰);Sumo1抗体(CST公司,美国);c⁃Myc 抗体 (Sigma公司,美国);辣根过氧化物酶标记的山羊抗小鼠或抗兔 IgG(Jackson ImmunoResearch 公司,美国);MG132、放线菌酮(cycloheximide,CHX)(Sgima 公司,美国);Myc⁃Senp1、Flag⁃Spop、Flag⁃Spop⁃K95R、 Flag⁃Spop⁃K110R、Flag⁃Spop⁃K95/110R 质粒均为本实验室自行构建。
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1.2 方法
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1.2.1 细胞培养
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WT 和 Senp1-/- MEFs 使用含 10%胎牛血清的 DMEM 高糖培养基,肾上皮细胞 HK⁃2 和 ccRCC 细胞 A498 使用含 10% 胎牛血清的 MEM 培养基, ccRCC细胞Caki⁃1和Caki⁃2使用含10%胎牛血清的 McCoy’s 5A 培养基,ccRCC 细胞 786⁃O 使用含 10% 胎牛血清的RPMI⁃1640培养基,置于37℃、5% CO2 培养箱中进行培养。取处于对数生长期的细胞进行后续实验。
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1.2.2 细胞转染
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细胞汇合度达70%~80%时,加入质粒转染液,转染 6~8 h 后,换成正常的细胞培养液继续培养至 36~48 h,提取细胞总RNA和总蛋白进行后续实验,或者是培养至一定时间,收集瞬时转染的细胞,进行后续的实验。
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1.2.3 细胞总RNA和总蛋白的提取
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细胞总 RNA 的提取:收集细胞,先将细胞用 PBS清洗1遍,加入RNAiso Plus,冰上静置 5 min,加入1/5体积的氯仿,4℃冰箱静置10 min,4℃ 12 000 g 离心 10 min。离心后,上清移至干净的 RNase⁃Free离心管中,加入等体积异丙醇,混匀-20℃冰箱冷冻 1 h,4℃ 12 000 g 离心 10 min,弃上清,加入 75%乙醇(DEPC 水配制),4℃ 12 000 g 离心 5 min,弃上清,4℃晾干10 min,加入10 μL DEPC水,冰上溶解 30 min,测定RNA浓度。
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细胞总蛋白的提取:收集细胞,先将细胞用 TBS 清洗 1~2 遍,加入适量的 RIPA 裂解液,刮板快速刮下细胞,将裂解液收集于干净的1.5 mL离心管中,冰上裂解15~30 min,4℃ 14 000 r/min离心20 min,离心后,将上清移至新的 1.5 mL 离心管中,吸取适量蛋白液进行 BCA 蛋白浓度的检测。加入相应体积的 5×上样缓冲液,95℃煮 5 min,使蛋白完全变性。
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1.2.4 免疫印迹实验(Western blot)
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制备好的蛋白样品常温14 000 r/min离心1 min,在SDS⁃PAGE胶上进行电泳。经湿转法恒压80 V,转膜 2 h,脱脂牛奶室温封闭 1 h,加一抗 4℃过夜。次日,TBST洗膜3次,每次15~20 min。室温孵育二抗2 h,洗膜后化学发光显影。
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1.2.5 实时荧光定量PCR
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使用 RNAiso 提取细胞总 RNA,逆转录试剂盒进行反转录,取10 μL反转录产物稀释至100 μL,取 1 μL做模板进行荧光定量PCR,软件Light Cycler 96 分析数据。每个实验组有3个复孔,实验结果重复 3 次。引物序列:GAPDH 上游 5′⁃CGACCACTTTGT⁃ CAAGCTCA ⁃ 3′,下游 5′ ⁃ CCCTGTT GCTGTAGC⁃ CAAAT ⁃3′;Spop 上游 5′ ⁃CCACCTCCGGCAGAAAT⁃ GTC⁃3′,下游5′⁃ CCTCCCGGCAAAAACTAAAGT⁃3′。
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1.2.6 邻位连接技术(proximity ligation assay,PLA)
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细胞转染质粒 24 h 后,PBS 清洗 1 遍,4%甲醛固定细胞,0.3% NP⁃40 透化细胞,根据 PLA 试剂盒中的步骤进行封闭、一抗孵育、添加探针、连接、扩增、封片,最后用激光共聚焦显微镜进行拍照分析。
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1.2.7 免疫荧光染色
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细胞转染后24 h,将细胞接种于用0.1%明胶包被的细胞爬片上,继续培养24 h后,PBS清洗1遍, 4%甲醛固定细胞,使用抗体稀释液(3% BSA、0.3% Triton X⁃100,溶于PBS)4℃下封闭并透化细胞1 h,之后4℃孵育一抗过夜。使用TBST清洗细胞2次,每次3~5 min,之后室温条件下荧光二抗避光孵育1 h,不同荧光二抗使用的稀释比例均为 1∶200。TBST 清洗细胞3次,每次3~5 min。最后使用封固剂(含 DAPI)将细胞爬片固定在载玻片上。拍摄使用 LSM900 激光共聚焦显微镜图像,图像处理使用ZEN 3.0(blue edition)软件。
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1.2.8 蛋白周转速率检测
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细胞接种于6孔板,待细胞长满后,用终浓度为 20 μmol/L的蛋白合成抑制剂CHX分别处理细胞各种不同时间,在相应时间点,收取蛋白样品进行 Western blot分析。
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1.2.9 相关性分析
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从GEO数据库中下载ccRCC患者的基因表达数据(GSE73731),利用 GraphPad Prism 7.0 对 SENP1 与 SPOP 的基因表达进行皮尔逊相关系数分析并作图。
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1.3 统计学方法
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采用 GraphPad Prism 7.0 进行统计分析并作图。计量资料采用均数±标准差()表示,组内比较采用重复测量数据的方差分析,两组间比较采用 t 检验分析,多组间比较采用单因素方差分析。 P <0.05为差异有统计学意义。
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2 结果
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2.1 Senp1 敲除下调 Spop 蛋白水平但不影响其 mRNA水平
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为了研究 Senp1 是否参与调控 Spop,本研究提取了WT和Senp1-/- MEFs的RNA和蛋白,检测Senp1 敲除对于 Spop 表达的影响。结果显示,Senp1 敲除后,Spop 的蛋白水平显著下降(图1A、B),但其 mRNA水平没有明显变化(图1C)。由于Senp1是去 SUMO 化酶,所以上述结果提示 Senp1 可能参与了 Spop的SUMO化修饰过程。
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随后,为了进一步确认Senp1对Spop蛋白水平的调控作用,在 Senp1-/- MEFs 中梯度回补了 Senp1 蛋白。Western blot 结果显示,随着Senp1蛋白水平的升高,Spop的蛋白水平也随之梯度升高(图1D),进一步说明去SUMO化酶Senp1能够调节Spop的蛋白水平。
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2.2 Senp1敲除后Spop蛋白稳定性下降
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通常认为,影响底物蛋白的降解速率,即蛋白周转率,是SUMO化修饰对底物蛋白进行调控的重要手段。为了检测Senp1是否影响Spop的蛋白周转率,利用 CHX(20 μmol/L)分别处理 WT 和 Senp1-/- MEFs不同时间后检测细胞中Spop的蛋白水平。结果显示,Senp1-/- MEFs中的Spop含量下降到50%的时间要短于 WT MEFs(图2A、B),表明 Senp1 敲除后,Spop的蛋白周转率变快,蛋白稳定性下降。
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后续,为了研究Spop蛋白是否通过蛋白酶体途径降解,利用蛋白酶体抑制剂MG132(20 μmol/L)处理 Senp1-/- MEFs。WB 结果显示,当用 MG132 抑制蛋白酶体活性后,细胞中的Spop有所升高(图2C),表明在Senp1-/- MEFs中Spop通过蛋白酶体途径降解。
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2.3 Senp1不影响Spop的亚细胞定位
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SUMO 化修饰除影响底物蛋白的周转速率外,还可以调控底物蛋白在细胞中的定位[18]。研究表明,在 ccRCC 中 SPOP 错误定位在胞质中并大量累积,靶向与细胞增殖和凋亡有关的底物降解,导致肿瘤增生[15]。为了研究去SUMO化酶Senp1是否参与调控 Spop 的亚细胞定位,分离了 WT 和 Senp1-/- MEFs 的胞核蛋白和胞浆蛋白,并分别检测其中的 Spop蛋白水平。Western blot结果显示,在WT MEFs 中,Spop 蛋白主要定位在细胞核中,仅有少量蛋白存在于胞浆中;Senp1-/- MEFs中Spop的分布情况与 WT MEFs 基本一致,表明 Senp1 的敲除并不影响Spop在细胞中的定位(图3A、B)。
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图1 敲除Senp1下调Spop蛋白水平,但不影响其mRNA水平
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Figure1 Senp1 knockout down⁃regulated Spop protein levels,but does not affect mRNA levels
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图2 Senp1敲除后Spop蛋白稳定性下降
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Figure2 The stability of Spop protein decreased after Senp1 knockdown
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为了进一步确认上述结果,利用免疫荧光技术分别检测了内源 Spop 和外源 Spop 在 WT 和 Senp1-/- MEFs 中的定位情况。结果显示,在 WT 和 Senp1-/- MEFs 中,无论内源还是外源 Spop 的亚细胞定位都与胞核高度重合,进一步表明Senp1并不影响Spop 在细胞核中的定位(图3C、D)。
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2.4 Senp1通过参与Spop的去SUMO化修饰实现对 Spop的蛋白调控
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初步确定Senp1能够上调Spop的蛋白水平后,为了研究该过程是否通过影响 Spop 的 SUMO 化修饰实现,首先对Spop的氨基酸序列进行了分析,在其MATH结构域中发现了2个潜在的SUMO化修饰位点,分别是第95位和第110位的赖氨酸(图4A)。随后构建了单 SUMO 化位点突变质粒 Flag ⁃Spop ⁃ K95R、Flag⁃Spop⁃K110R 和双 SUMO 化位点突变质粒 Flag ⁃ Spop ⁃ K95/110R,并分别在 WT 和 Senp1-/- MEFs中进行过表达。结果显示,当在Senp1-/- MEFs 中过表达野生型Spop时,其蛋白表达量较WT MEFs 减少,说明 Senp1 敲除后,Spop 的 SUMO 化修饰增加,影响Spop的蛋白水平。而当在Senp1-/- MEFs中过表达Spop突变体时,即Spop不能进行SUMO化修饰时,其蛋白水平相比WT MEFs不再减少(图4B)。
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图3 Senp1不影响Spop的亚细胞定位
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Figure3 Senp1 did not affect subcellular localization of Spop
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2.5 SUMO 化位点突变 Spop 与 Sumo1 在细胞核中结合变弱
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为了进一步研究Spop蛋白的SUMO化修饰,分别在WT和Senp1-/- MEFs中共表达Sumo1和野生型 Spop或其SUMO修饰位点的突变体,利用PLA实验检测 Spop 与 Sumo1 蛋白之间的相互作用(图5A)。统计结果显示,当细胞中存在Senp1蛋白时,与过表达的Flag⁃Spop蛋白相比,过表达的Flag⁃Spop⁃K110R 蛋白和Flag⁃Spop⁃K95/110R蛋白与Sumo1蛋白的相互作用显著减少,表明 K110 位点的突变能够影响 Spop 与 Sumo1 的相互作用。进一步统计这些相互作用在胞质、胞核中的分布情况,结果显示,PLA阳性信号主要集中在胞核中,说明Spop蛋白主要在胞核中进行 SUMO 化修饰(图5B)。而当细胞中无 Senp1 蛋白时,野生型 Spop 与 Sumo1 的相互作用较 WT MEFs 有所下降,这可能是 Senp1 的缺失导致 Spop 蛋白稳定性下降,进而蛋白量减少所致;除此之外,和WT MEFs组一致,与过表达的Flag⁃Spop蛋白相比,过表达的 Flag ⁃Spop ⁃K110R 和 Flag ⁃Spop ⁃ K95/110R 蛋白与 Sumo1 蛋白相互作用降低。有趣的是,Flag ⁃ Spop ⁃ K95R 与 Sumo1 的相互作用在 Senp1-/- MEFs 中显著下降,推测这可能是因为一般情况下 K95 位点在 Spop 与 Sumo1 蛋白结合中的作用较小,需要在SUMO修饰大量存在的情况下,相互作用的微小变化才能显现出来。同样分别统计了 PLA 信号在 Senp1-/- MEFs 细胞中的分布情况,结果与WT MEFs组一致,SUMO化修饰后的Spop蛋白主要定位在胞核中(图5C)。
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图4 Senp1通过参与Spop的SUMO化修饰实现对Spop的蛋白调控
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Figure4 Senp1 regulated Spop protein level by participating in SUMOylation modification of Spop
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2.6 SPOP和SENP1在肾癌中呈正相关
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鉴于 SPOP 在 ccRCC 中高表达且具有核心作用,为了研究其高表达是否与去SUMO化修饰相关,首先利用 GEO 数据库中 ccRCC 患者的基因表达数据,对 SPOP 和 SENP1 在 ccRCC 患者中的表达进行了相关分析。结果表明,ccRCC患者的SPOP表达和 SENP1表达呈明显的正相关关系(r=0.44,P <0.001,图6A)。同时,还检测了肾上皮细胞HK⁃2和ccRCC 细胞 Caki ⁃ 1、Caki ⁃ 2、A498、786 ⁃ O 中的 SENP1 和 SPOP表达情况,ccRCC 细胞中SPOP的蛋白水平高于正常肾上皮细胞。ccRCC 细胞中 SENP1 的表达也比正常细胞多,与已有报道一致[16],提示 ccRCC 中SPOP的表达可能受SENP1的调控(图6B)。
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图5 SUMO化位点突变下调Spop与Sumo1的相互作用
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Figure5 Mutations at the SUMOylation site down⁃regulated Spop⁃Sumo1 interaction
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3 讨论
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肾细胞癌(renal cell carcinoma,RCC)是泌尿系统中的常见恶性肿瘤之一。全世界每年约有 20.9 万人确诊RCC,约10.2万人死于该疾病[19]。ccRCC 是 RCC 中最常见的病理亚型,约占 75%[20]。大约 30%的 RCC 患者在确诊时已经发生了癌细胞的转移[21],未转移的RCC 患者在进行手术切除治疗后,约40%会复发,并且RCC对放疗、化疗均不敏感,患者的5年生存率<10%[22]。因此探索RCC发病的分子机制,寻找RCC早期诊断和治疗的分子靶标迫在眉睫。
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作为泛素连接酶E3家族成员Cul3结合底物蛋白的接头蛋白,SPOP 介导许多底物蛋白的泛素化修饰,导致蛋白降解,从而参与细胞的多种进程。在 ccRCC 中,SPOP 的异常高表达与低氧诱导因子 (hypoxia inducible factor,HIF)密切相关,肿瘤内部的低氧微环境会活化HIF,SPOP作为HIF的下游靶基因被启动转录,SPOP错误定位在胞质中并大量累积,靶向与细胞增殖和凋亡有关的底物降解,最终导致肿瘤增生[15]。
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蛋白的翻译后修饰对于蛋白行使功能具有重要作用,SUMO化修饰作为蛋白翻译后修饰的一种已被证实可以调控蛋白的活化、功能和亚细胞定位。近年来人们发现,参与SUMO化修饰的酶在肿瘤中存在异常表达,如在 SPOP 发生突变的前列腺癌患者中,去 SUMO 化酶 SENP7 呈现出高表达。 SENP7 通过减少异染色质蛋白 1α(heterochromatin protein 1α,HP1α)的SUMO化修饰和沉默与HP1α相关的基因来延缓细胞衰老。抑癌因子 SPOP 突变后,失去诱导 SENP7 降解的能力,细胞过度增殖最终导致肿瘤发生[23]。
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图6 SPOP和SENP1的表达在肾透明细胞癌中呈正相关
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Figure6 The expression of SPOP and SENP1 were positively correlated in clear cell renal cell carcinoma
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以上研究表明SPOP的SUMO化修饰过程可能在ccRCC中具有重要作用,但作为调控SUMO化修饰的关键分子之一,SENP1 与 SPOP 之间的关系还不清楚。本研究发现,MEFs中去SUMO化酶Senp1 参与 Spop 的表达调控,Senp1 敲除后,Spop 蛋白的稳定性下降并通过蛋白酶体途径降解,这一现象可能与 Senp1 敲除,改变 Spop 的 SUMO 化修饰状态有关。除此之外,还发现敲除 Senp1 后,Spop 在 MEFs 细胞核中的定位并没有发生改变,说明Senp1可能并不参与调控 Spop 的亚细胞定位。另外,生物信息学分析和 Western blot 结果也表明,ccRCC 患者的 SPOP 表达和 SENP1 表达呈明显的正相关关系,提示 SPOP 的表达在一定程度上受 SENP1 的调控。综上,SENP1 可能成为 ccRCC 新的潜在治疗靶点。
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摘要
目的:研究小泛素相关修饰物(small ubiquitin-related modifier,SUMO)修饰对SPOP(speckle type BTB/POZ protein) 蛋白水平和细胞定位的影响,并尝试在肾透明细胞癌(clear cell renal cell carcinoma,ccRCC)中探讨 SUMO 特异性蛋白酶 1 (sentrin-specific proteases 1,SENP1)和SPOP之间的相关性。方法:利用野生型(wild type,WT)和Senp1敲除的小鼠胚胎成纤维细胞研究Senp1对Spop蛋白水平和细胞定位的影响,并通过比较外源WT-Spop和Spop的SUMO修饰位点突变体的蛋白表达量,进一步确认SUMO修饰对Spop蛋白水平的影响。后续通过邻位连接技术(proximity ligation assay,PLA)研究WT-Spop及其 SUMO修饰位点突变体与SUMO1的结合能力。最后通过ccRCC患者的RNA表达数据和ccRCC细胞系探讨SENP1和SPOP在 ccRCC中的相关性。结果:Senp1 敲除下调小鼠胚胎成纤维细胞中 Spop 的蛋白量和稳定性,但不影响其细胞核定位。突变 Spop 的 SUMO 修饰位点后,其与 Sumo1的结合能力下降,蛋白量也有所降低。SENP1和SPOP的表达在ccRCC中呈正相关。结论:Senp1通过去SUMO化修饰稳定Spop蛋白,SENP1和SPOP的表达在ccRCC中呈正相关。
Abstract
Objective:To elucidate the impact of small ubiquitin - related modifier(SUMO)modification on the protein levels and cellular localization of speckle type BTB/POZ protein(SPOP)and explore the correlation between sentrin - specific proteases 1 (SENP1)and SPOP in clear cell renal cell carcinoma(ccRCC). Methods:Using wild type(WT)and Senp1 knockout murine embryonic fibroblasts(MEFs),we investigated the effects of Senp1 on Spop protein level and cellular localization. By comparing the protein expression levels of WT-Spop and its SUMO modification site mutants,the effects of SUMO modification on Spop protein levels were further confirmed. Proximity ligation assay(PLA)was employed to study the impact of Spop SUMOylation site mutation on the binding ability with small ubiquitin - related modifier 1(SUMO1). Finally,the correlation between SENP1 and SPOP in ccRCC was examined utilizing datasets and ccRCC cell lines. Results:Senp1 knockout down - regulated the protein level and stability of Spop in MEFs without affecting its nuclear localization. Mutating the SUMOylation modification site of Spop attenuated its binding affinity with Sumo1,consequently leading to diminished protein levels. Notably,the expression of SENP1 and SPOP exhibited a positive correlation in ccRCC. Conclusion:Senp1 stabilizes Spop protein through deSUMOylation modification. The expression of SENP1 and SPOP is positively correlated in ccRCC.
Keywords
SPOP ; SENP1 ; SUMO modification ; clear cell renal cell carcinoma