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第42卷第5期 王雨竹,张 许,李 仲. 成熟SVFs细胞与Hepa1⁃6细胞共培养模型的建立及对肝细胞脂
2022年5月 代谢的影响[J]. 南京医科大学学报(自然科学版),2022,42(05):603-609 ·605 ·
养的 Hepa1⁃6 细胞作为对照,培养条件为无血清 DEPC处理过的ddH2O溶解30 min 即可。使用 Nana⁃
DMEM/F12培养基。 Drop 微量核酸测定仪对所得 RNA 进行定量及纯度
[18]
1.2.4 Hepa1⁃6细胞甘油三酯水平及总胆固醇水平 分析 。
检测 第一步去除基因组DNA(genomic DNA,gDNA),
按照每 1×10 个细胞加入100 μL细胞裂解液,混 加入5×gDNA Eraser Buffer 2 μL,gDNA Eraser 1 μL,
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匀后室温静置10 min充分裂解细胞。所得裂解物, Total RNA 1 μg,RNase Free ddH2O 加 至 10 μL,
取一半于 70 ℃加热 10 min,完毕后进行涡旋混匀。 42 ℃ 5 min 完成第一步反应。第二步为逆转录反
20 ℃ 2 000 g 离心 10 min 后,取上清液进行酶学测 应,向第一步反应液(10 μL),添加 PrimeScript RT
定。另一半于4 ℃ 16 000 g离心30 min后,进行蛋白 Enzyme Mix I 1 μL,RT Primer Mix 1 μL,5×Prime⁃
浓度测定。酶学测定方法:按照试剂盒 A 液和 B 液 Script Buffer 2(for real time)4 μL,RNase Free ddH2O
4∶1 的比例配制反应液,每孔 10 μL 上清液加入 4 μL,配成共计 20 μL 的反应体系,37 ℃15 min,
190 μL 反应液。于 37 ℃反应 15 min,550 nm 酶标 85 ℃ 5 s完成逆转录。逆转录cDNA保存于-20 ℃。
仪读数,依照标准曲线计算甘油三酯含量。标准曲 使用实时荧光定量聚合酶链反应(quantitative
线绘制方法:使用ddH2O,将4 mmol/L甘油标准品倍 real⁃time PCR)测定 SVF 分化标志物以及 Hepa1⁃6
比稀释为 1 000.0、500.0、250.0、125.0、62.5 μmol/L, 脂代谢通路变化。将 cDNA 稀释 5 倍后使用。取
与酶学样本同时测定即可。蛋白浓度测定方法:取 稀释后 cDNA 1 μL,SYBRGreen I 5 μL,上游引物
蛋白测定样本稀释 50 倍后进行测定。将蛋白浓度 (1 μmol/L)2 μL,下游引物(1 μmol/L)2 μL 混匀后,
测定试剂盒A液和B液以1∶1混合即得反应液。取 放入LightCycler480型Real⁃time PCR 仪进行实时荧
10 μL 稀释后的蛋白样本加入 100 μL 反应液,于 光PCR反应。反应程序为:95 ℃ 10 min,95 ℃,15 s,
37 ℃反应 30 min,562 nm 酶标仪读数,依照标准曲 60 ℃ 60 s,40 个循环,95 ℃ 10 s,60 ℃ continuous,
线计算蛋白浓度。标准曲线绘制方法:使用ddH2O, 40 ℃ 20 min。引物序列见表1。
将 0.5 mg/mL 牛血清白蛋白(bovine serum albumin, 1.3 统计学方法
BSA)标准品倍比稀释为 0.500 0、0.250 0、0.125 0、 所有实验重复 3 遍,用 Graphpad Prism 软件对
0.062 5、0 mg/mL,与蛋白样本同时测定即可。使用蛋 实验数据进行统计学处理及作图,结果以均值±标
白浓度校正甘油三酯含量。 准误(x ± sx )表示。使用两独立样本 t 检验分析结
使用生理盐水收集细胞,超声破碎后,取2.5 μL 果,P < 0.05 为差异有统计学意义。
清液(无需离心)添加 250 μL 反应液,于 37 ℃反应
2 结 果
10 min,510 nm酶标仪读数,依照标准曲线计算总胆
固醇含量。标准曲线绘制方法:使用ddH2O,将5.17 2.1 SVF细胞单纯培养在倒置显微镜下呈现梭形
mmol/L 胆固醇标准品倍比稀释为 2.59、1.29、0.65、 在 DMEM/F12 完全培养基中,通过原代提取的
0.32、0.16、0.08 μmol/L,与样本同时测定即可。蛋白 SVF细胞,大部分24 h即可贴壁,呈现灰色团状未伸
浓度测定方法同甘油三酯测定。使用蛋白浓度校 展的状态(图1A)。同时,视野里可见较多无法贴壁
正总胆固醇含量。 的杂细胞,需在次日进行连续换液以及 PBS 洗涤得
1.2.5 RNA提取及相对定量水平检测 以除去。培养 48 h,细胞逐渐伸展开,呈现梭形、多
6 孔板加入 1 mL TRIzol,使用无菌无酶枪头刮 角形(图 1B),表明 SVF 已成功提取。培养 72 h 后,
下裂解细胞,置于无菌无酶离心管内。向离心管加 SVF细胞完全伸展开,形态变得饱满(图1C)。此后
入 200 μL 氯仿,剧烈上下颠倒振荡 30 s。室温静置 经3~5 d,SVF细胞密度可达100%,呈现紧密接触抑
5 min 后,取上清液转移至新的无菌无酶离心管内。 制的状态。
加入与上清液等体积的预冷异丙醇,上下颠倒混匀, 2.2 SVF细胞经诱导分化6 d后成为成熟脂肪细胞
室温静置15 min。4 ℃ 10 000 g离心 15 min,取白色 当SVF 细胞接触抑制 2 d 后,首先使用分化液
沉淀加入 1 mL 已预冷的 75%乙醇,焦碳酸二乙酯 Ⅰ(含有 5 μmol/L 地塞米松,0.5 μg/mL 胰岛素,
(diethylpyrocarbonate,DEPC)水 配 制 ,颠 倒 洗 涤 。 0.5 mmol/L 3⁃异丁基⁃1⁃甲基黄嘌呤,1 μmol/L 罗格
4 ℃ 10 000 g 离心 10 min,弃上清,再次空离离心 列酮的 DMEM/F12 完全培养基)处理 SVF 细胞 4 d,
管。吸去残留乙醇,白色沉淀即为 RNA。加入 以诱导 SVF 向成脂方向分化。之后使用分化液Ⅱ