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第42卷第6期       刘子勤,李文文,吴敬珍,等. Liguzinediol调控心肌细胞线粒体动力学和自噬改善心肌梗死后大鼠
                  2022年6月              心功能的机制[J]. 南京医科大学学报(自然科学版),2022,42(06):769-779                   ·771 ·


                冷却后-20 ℃保存备用。配制12%分离胶,按30 μg                      1.2.10 JC⁃1线粒体膜电位试剂盒检测
                上样量进行上样,同时加入 5 μL 蛋白 Marker,于恒                        细胞接种于底部放有 12 mm 圆形玻片的 24 孔
                压 80~100 V 电泳。PVDF 膜浸于甲醇活化 15 s,于                 板中,待细胞密度生长至80%左右加入JC⁃1荧光探
                低温环境下转膜。转膜条件:恒压100 V,1.5 h。转                      针,孵育30 min后给药(方法同1.2.6)。
                膜完成后,用5%脱脂奶粉溶液封闭2 h,经TBST充分                       1.3  统计学方法
                洗涤后(5 min/次、5 次),与相应目的蛋白(MFN1、                        彩用 SPSS 21.0 统计软件,计量资料以均数±标
                DRP1、FUNDC1、LC3Ⅰ/Ⅱ、P62、GAPDH抗体)结合,                准差(x ± s)表示,对多组数据进行单因素方差分析,
                4 ℃过夜。TBST充分洗涤后(5 min/次、5次),与相应                   重复测量数据进行重复测量方差分析,两两比较采
                二 抗 室 温 结 合 2 h,TBST 充 分 漂 洗(5 min/ 次 、           用LSD⁃t检验,P < 0.05为差异有统计学意义。
                5 次),滴加ECL发光液,于成像系统中曝光。
                                                                  2  结 果
                1.2.6  氧糖剥夺(oxygen glucose deprivation,OGD)
                模型构建、分组及给药                                        2.1  Lig对心肌梗死模型大鼠心功能的影响
                    为模拟心肌缺血状态,选用OGD模型。使用氯                             超声心动图结果显示(图1),相较于假手术组,
                化钴诱导缺氧,MTT法检测不同浓度氯化钴和Lig对                         模型组大鼠的 EF 和 FS 均显著下降,表明心肌梗死
                H9C2细胞活力的影响,与对照组相比,培养24 h后                        模型大鼠的心脏功能显著降低。给予Dig和不同剂
                H9C2细胞存活率50%的氯化钴浓度为600 μmol/L,                    量的 Lig 治疗的大鼠,相较于模型组,EF 和 FS 明显
                                                          [16]
                依据前期实验,选择 Lig 最高浓度为 100 μmol/L               ,    升高,LVVOLs 和 LVIDs 减小,超声结果显示 Lig 可
                此时细胞存活率为100%;MTT法检测600 μmol/L氯                    改善左室收缩功能从而改善心脏泵血。
                化钴+无糖培养基在不同时间点对 H9C2 细胞活力                         2.2  Lig 对心肌梗死模型大鼠心肌损伤标志物的
                的影响,与对照组相比,培养12 h后H9C2细胞存活                        影响
                率为 50%;因此选择 600 μmol/L 氯化钴+无糖培养                       可根据大鼠血清中 BNP、LDH 含量判断心肌损
                基培养12 h复制H9C2细胞OGD模型。Western blot                 伤的严重程度,通过ELISA试剂盒对BNP、LDH含量
                检测 HIF⁃1α表达升高验证模型复制成功。细胞密                         进行检测,分析结果发现模型组大鼠血清BNP、LDH
                度生长至80%左右给药,分为空白对照组、模型组、                          水平较假手术组显著升高(图 2)。与模型组相比,
                Lig(100 μmol/L Lig)组、Lig+Rapa(100 μmol/L Lig+     Dig组、Lig 10 mg/kg和Lig 20 mg/kg组可显著降低血
                20 μmol/L Rapa)组 、Lig+3⁃MA(100 μmol/L Lig+        清BNP、LDH水平,说明Lig可显著改善大鼠左冠状
                10 mmol/L 3⁃MA)组。提前加入 Lig、Rapa、3⁃MA 预             动脉前降支结扎所致的心脏损伤。
                处理2 h,OGD处理12 h后收集细胞样本。                           2.3 Lig对心肌梗死模型大鼠心肌组织中ATP含量的
                1.2.7  转染 Ad⁃mCherry⁃GFP⁃LC3B 检测 H9C2 细胞          影响
                自噬溶酶体形成                                               通过试剂盒检测心肌组织中 ATP 含量(图 3),
                    细胞接种于底部放有 12 mm 圆形玻片的 24 孔                    结果显示:与假手术组相比,模型组 ATP 含量显著
                板中,待细胞密度达到50%时进行转染,MOI值=10,                       降低;与模型组相比,Lig(10 mg/kg、20 mg/kg)组
                每孔加入 10 μL 转染试剂,轻轻晃动混匀后放入培                        ATP含量明显升高。
                养箱培养 24 h 后更换培养液。待细胞密度生长至                         2.4  Lig 对心肌梗死模型大鼠心肌和线粒体形态的
                80%左右进行给药(方法同1.2.6)。                              影响
                1.2.8 荧光探针检测H9C2细胞ROS水平                               HE 染色观察心肌形态,通过电镜进一步探寻
                    细胞接种于底部放有 12 mm 圆形玻片的 24 孔                    心肌细胞中线粒体形态结构的变化,结果显示(图
                板中,待细胞密度生长至80%左右加入ROS荧光探                          4):光镜下,假手术组大鼠心肌排列紧密,未观察到
                针,孵育30 min。进行药物处理后镜下观察拍照(方                        心肌断裂、细胞间隙变大,模型组大鼠可见心肌断
                法同1.2.6)。                                         裂,细胞间隙增大,给予 Dig 和不同剂量 Lig 治疗组
                1.2.9 TUNEL试剂盒检测细胞凋亡                              大鼠心肌断裂不同程度减少,间隙变窄。电镜下,
                    细胞接种于底部放有 12 mm 圆形玻片的 24 孔                    假手术组大鼠心肌线粒体呈圆形和椭圆形,嵴结构
                板中,待细胞密度生长至80%左右给药。固定细胞                           致密,规律分布于肌原纤维之间,肌原纤维排列整
                后按试剂盒说明书进行处理(方法同1.2.6)。                           齐连续,可见清晰的横纹,有自噬体形成;模型组大
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