Page 78 - 南京医科大学学报自然科学版
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第41卷第8期
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              国),终浓度为 5 μmol/L 的 ADP(Chronolog 公司,美             组结果,将氯吡格雷低反应组和对照组患者的总
              国),氢氧化钠、盐酸、冰醋酸(上海凌峰化学试剂有                          RNA 分别混为 2 个 RNA 池。分别从 2 组 RNA 池中
              限公司),乙二胺四乙酸、琼脂糖、MOPS、PBS 粉剂                       取RNA样本1.5 μg,按照相应配比加入10×MOPS、甲
             (合肥Biosharp公司),枸橼酸钠(西陇化工股份有限                       醛、甲酰胺并混匀,用1%琼脂糖凝胶进行变性电泳。
              公司),无水乙醇、甲醛(上海国药集团化学试剂有                           1.2.3 测序文库的构建及测序
              限公司),DEPC 水(Invitrogen 公司,美国),甲酰胺                      每例样本取 1.5 μg 总 RNA 行 15%尿素聚丙烯
             (上海麦克林生化科技有限公司),5 mL枸橼酸钠1∶                         酰胺凝胶电泳,电泳后对18~32 nt片段进行切割、洗
              9 抗凝的采血管(BD 公司,美国),CD45 抗体、LD 磁                   脱、纯化回收。采用 Small RNA Sample Prep Kit(Il⁃
              珠分选柱(Miltenyi Biotec 公司,德国),0.22 μm无菌             lumina,美国)构建小RNA文库。纯化后的小RNA序
              滤器(Merck Millipore公司,德国)。                         列采用T4 RNA连接酶将接头引物分别连接至2个文

              1.2  方法                                           库的序列 5′端和 3′端,逆转录合成 cDNA 第一链,
              1.2.1 血小板聚集率测定                                    PCR建立小RNA文库。利用Illumina HiSeq 2500测
                  在患者服用氯吡格雷后2.5 h,用含3.2%枸橼酸                     序平台对该文库进行高通量测序。

              钠抗凝管采集肘静脉血样8 mL,并于标本采集后2 h                        1.2.4 小RNA数据处理和信息分析
              内完成 LTA 法血小板聚集功能检测,具体方法如                               测序所得长度为51 nt 的小RNA 序列通过去接
              下:在常温下将采集的血标本以200 g离心8 min,用                      头、去除低质量和污染序列,最终获得18~32 nt的高
              移液枪缓慢抽取离心后血标本的上清液以获取富                             质量小 RNA 序列。统计小 RNA 的种类、数量及长
              血小板血浆(platelet rich plasma,PRP);用全自动血             度分布,初步判断小RNA质量。采用mirdeep2软件
              液分析仪检测PRP中的血小板计数;将吸取PRP后                          将所得小RNA序列与参考基因组进行比对分析,再
              剩余的血样常温下以2 460 g离心10 min,用移液枪                     将匹配序列分别与 GenBank 和 Rfam 10.0 数据库进
              缓慢抽取血标本的上清液以获取贫血小板血浆                              行对比,筛选出 miRNA 序列并分类注释,分析其表
             (platelet poor plasma,PPP);用 PPP 作为稀释液将            达情况。
              PRP中的血小板浓度稀释至 250×10 /L(如PRP中的                    1.2.5 miRNA差异表达分析
                                              9
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              血小板浓度在250×10 /L以下,则无需稀释);向PRP                          将样本中的 miRNA 表达量标准化为 TPM(tags
              中加入2.5 μL终浓度为5 μmol/L的ADP,测定8 min                 per million),应用 EdgeR 软件对 2 对样本已知 miR⁃
              最大血小板聚集率。                                         NA表达差异分析统计。将“差异倍数”绝对值≥2且
                  参照CREST研究,将ADP诱导的血小板聚集率                       P < 0.05的miRNA定义为差异表达的miRNA。差异
             (platelet aggregation induced by adenosine diphos⁃  倍数=Log2 (氯吡格雷低反应组 miRNA 标准化的表
              phate,PLADP )大于上四分位数定义为氯吡格雷低反                     达量/对照组miRNA标准化的表达量)。
                  [7]
              应性 ,小于下四分位数者设为对照组。                                1.3  统计学方法
              1.2.2 血小板纯化与RNA提取及变性电泳                                 计量资料经正态检验符合正态分布者采用均
                  在患者进行冠状动脉造影时,经鞘管采集15 mL                       数±标准差(x ± s)表示,两组计量资料的比较采用独
              动脉血于枸橼酸钠抗凝管,以 200 g 离心 10 min,移                   立样本的 t 检验;不符合正态性分布者用中位数与
              取上层 PRP,用免疫磁珠法分选白细胞与血小板比                          四分位数[M(P25,P75 )]表示,组间比较采用非参数
              例低于 1∶5 000 000 的纯化血小板(具体操作参考                     检验中的秩和检验;计数资料以百分率表示,计数
              CD45 MicroBeads LD 磁珠分选柱的说明书)。用                   资料比较采用χ 检验或 Fisher’s 精确检验。所有数
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              TRIzol 裂解上述纯化血小板,再用 mirVana             TM  miR⁃  据采用 SPSS 20.0 统计学处理,P < 0.05 为差异有统
              NA Isolation Kit 提取裂解后血小板中的总 RNA(具                计学意义。
                                         TM
              体操作参考 TRIzol 及 mirVana miRNA Isolation Kit
                                                                2  结 果
              说明书),最终将每份样本的总 RNA 溶解于 20 μL
              无 RNase 的的 DEPC 水中置-80 ℃冰箱储存。通过                   2.1  临床基线资料及患者分组
              Nanodrop 分光光度计检测每个样本总 RNA 的浓度                          根据入选患者的 PLADP 结果计算出四分位数
              及 260 nm/280 nm 的吸光度(OD)比值,确认每个总                  P25=19.5%,P75=48.5%。选取PLADP>48.5%的氯吡格
              RNA 样本的 OD 比值均在 1.8~2.0 之间。按上述分                   雷低反应性患者19例为低反应组,为了更明显地筛
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