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第44卷第10期
·1356 · 南 京 医 科 大 学 学 报 2024年10月
中孵育 20 min,吸除上清,用 JC⁃1 染色缓冲洗涤液 数据以均数±标准误(x ± sx)表示。多个样本间均数
洗涤 2 次,加入 2 mL 细胞培养液,使用荧光显微镜 比较采用单因素方差分析,组间均数比较使用LSD⁃
观察并拍照,使用 Image J 软件分析平均荧光强度, t检验法。P < 0.05为差异具有统计学意义。
计算红色/绿色荧光度比值。
2 结 果
1.2.8 ROS检测
将各组细胞接种于提前放置爬片的24孔板中, 2.1 巨噬细胞鉴定
向各孔加入含10 μmol/L DCFH⁃DA的RPMI 1640培 免疫荧光染色结果显示,培养的细胞中 CD68
养基,37 ℃细胞培养箱中孵育1 h。弃去上清,使用 (巨噬细胞标志物)表达阳性,提示 PMA 成功诱导
荧光显微镜拍摄细胞内ROS荧光图像。使用Image THP⁃1细胞贴壁分化为巨噬细胞(图1)。
J软件分析平均荧光强度。 2.2 Li对巨噬细胞活性的影响
1.3 统计学方法 与 Control 组 相 比 ,不 同 浓 度 Li(1、10、100、
数据分析采用 GraphPad Prism 6.0 软件。所有 1 000、10 000 nmol/L)处理巨噬细胞24 h后,细胞活性
CD68 DAPI Merge
50 μm 50 μm 50 μm
图1 巨噬细胞免疫荧光鉴定(×400)
Figure 1 Immunofluorescence identification of cultured macrophages(×400)
差异无统计学意义(P > 0.05),提示在1~10 000 nmol/L 组 NLRP3、Caspase⁃1 p20 表达水平降低,差异有统
内,Li对巨噬细胞无明显细胞毒性(图2)。1 nmol/L 计学意义(P <0.05,图 3)。以上结果提示 Li(10、
浓度太低不易显示出差异,10 000 nmol/L在人体内浓 100、1 000 nmol/L)可浓度依赖性抑制 SiO2 诱导的
度太高,故选择 10、100、1 000 nmol/L 3 个浓度梯 NLRP3及Caspase⁃1 p20蛋白表达。
度完成后续实验。 2.4 Li 对巨噬细胞 IL⁃1β、IL⁃10 及 TGF⁃β1 表达的
影响
150
SiO2 组 IL⁃1β水平为(127.00±17.05)pg/mL,较
(%) 100 Control 组(37.72±10.23)pg/mL 明显增加,差异有
Cell viability 50 (10 nmol/L)组、SiO2+Li(100 nmol/L)组及 SiO2+Li
统计学意义(P < 0.001);与 SiO2 组相比,SiO2+Li
(1 000 nmol/L)组 IL ⁃ 1β 水 平 分 别 为(77.40 ±
12.55)、(64.74±6.86)、(41.55±12.74)pg/mL,较 SiO2
0
Li(nmol/L) 0 1 10 100 1 000 10 000 组降低,差异有统计学意义(P < 0.05,P < 0.001,图
图2 Li对培养的巨噬细胞活性的影响(n=3) 4A)。
Figure 2 Effects of Li on the cell viability in cultured mac⁃ SiO2 组 IL⁃10 水平为(212.70±6.97)pg/mL,较
rophages(n=3)
Control组(70.88±3.21)pg/mL明显增加,差异具有统
2.3 Li对巨噬细胞NLRP3活化的影响 计学意义(P < 0.001);SiO2+Li(10 nmol/L)组、SiO2+Li
与Control组相比,50 μg/cm SiO2作用于巨噬细胞 (100 nmol/L)组及 SiO2+Li(1 000 nmol/L)组 IL⁃10 水
2
24 h,可显著上调NLRP3和活化的Caspase⁃1 p20蛋白 平分别为(127.80±7.70)、(110.80±6.53)、(85.13±
表达(P <0.001)。与SiO2组相比,SiO2+Li(10 nmol/L) 7.17)pg/mL,较SiO2组明显降低,差异有统计学意义
组、SiO2+Li(100 nmol/L)组及 SiO2+Li(1 000 nmol/L) (P < 0.001,图4B)。