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第44卷第5期 王诏鹤,孔秋月,丁正年. 热休克蛋白A12A对内毒素血症肝损伤的作用及机制研究[J].
2024年5月 南京医科大学学报(自然科学版),2024,44(5):615-625 ·617 ·
限公司),山羊抗兔二抗和抗鼠二抗(Vector Labora⁃ 尾动脉加压和释压的同时检测血流信号,得出血
tories 公司,美国),甲醛、RIPA(上海碧云天生物技 压值。
术有限公司),BCA蛋白定量试剂盒、TRIzol(赛默飞 1.2.5 血气分析
世尔科技有限公司,美国),High⁃sig ECL Western LPS 或 NS 作用 6 h 后,使用 1.5%异氟烷麻醉小
blot 底物(上海天能生物科技有限公司),Apoa1、 鼠,插管并通气,使用 iSTA T Analyzer MN:300 血气
Apob、Apom引物(北京擎科生物科技有限公司)。相 分析仪对左心室抽取的动脉血进行血气分析,包括
关引物序列如下,Apoa1 上游:5′⁃GGC⁃ACGTATG⁃ 血氧分压(PO2)、血二氧化碳分压(PCO2)和血氧饱
GCAGCAAGAT ⁃ 3′ ,下 游 :5′ ⁃ CCAAGGAGGAG⁃ 和度(SO2)。
GATTCAAACTG⁃3′;Apob 上游:5′⁃AAGCA⁃CCTCC⁃ 1.2.6 小鼠肝功能、血清脂蛋白含量检测
GAAAGTACGTG⁃3′,下游:5′⁃CTCCAGCTCTACCT⁃ 取小鼠血液,1 500 r/min离心15 min取血清;采
TACAGTTGA⁃3′;Apom 上游:5′⁃TAACTCCATGAAT⁃ 用全自动生化分析仪检测小鼠血清丙氨酸氨基转
CAGTGCCCT⁃3′,下游:5′⁃CCCGCAATAAAGTAC⁃ 移酶(alanine aminotransferase,ALT)、天冬氨酸氨
CACAGG⁃3′。过表达Hspa12a的腺病毒及阴性对照 基转移酶(aspartate aminotransferase,AST)、高密度
(上海吉凯生物科技有限公司)。 脂蛋白胆固醇(high⁃density lipoprotein cholesterol,
1.2 方法 HDL⁃C)和低密度脂蛋白胆固醇(low⁃density lipopro⁃
1.2.1 生物信息学分析 tein cholesterol,LDL⁃C)水平。
应用GEO数据库,获得盲肠结扎穿孔所致脓毒 1.2.7 组织学分析
症小鼠及假手术小鼠肝脏的 mRNA 标准化表达水 LPS 或 NS 作用 6 h 后,取小鼠肝和肠组织用
平(n=3),使用 GraphPad Prism 8 制作直方图,使用 10%福尔马林固定,制备石蜡切片,进行苏木素⁃伊
R 软件制作聚类热图以及火山图。火山图差异基因 红(hematoxylin⁃eosin,HE)染色,通过显微镜观察分
筛选标准为P < 0.01且|log2FC| > 2。 析结果。每个样本选取 6 个视野,进行肝和肠组织
1.2.2 内毒素血症小鼠模型建立 损伤程度评分及肝组织炎症病灶数量统计。肠组
-/-
WT 小鼠和 Hspa12a 小鼠分别腹腔注射 LPS 织损伤程度根据Chiu’s评分标准 [14] 进行评分,具体
(5 mg/kg)或生理盐水(normal saline,NS),将小鼠分 评分标准如下:肠黏膜、绒毛正常(0 分);在绒毛顶
-/- 端中出现肠黏膜上皮下间隙扩大,常伴有毛细血管
为 NS⁃WT 组、NS⁃Hspa12a 组、LPS⁃WT 组和 LPS⁃
Hspa12a 组。注射后6 h进行相应检测和分析。 充血,炎症细胞浸润(1 分);肠上皮下间隙显著扩
-/-
1.2.3 小鼠体温检测和活动评分 张,绒毛顶端上皮与固有层中度分离(2分);固有层
LPS(5 mg/kg)作用 0、2、4 和 6 h 后使用直肠探 大量分离,部分绒毛顶端脱落(3 分);绒毛及固有
头检测小鼠体温。同时在上述时间段内按照文中 层脱落,毛细血管扩张(4 分);固有层破坏,伴出血
所描述的方法进行动物活动评分 [13] 。观察小鼠在 或溃疡(5 分)。肝组织损伤程度根据参考文献所
2 min 内的姿势和活动,4 分(正常):小鼠没有出现 述标准进行评分 [15] :正常肝组织(0分);肝窦充血水
驼背姿势,有自发的快速活动,期间穿插着进食和 肿(1 分);肝细胞胞浆空泡化(2 分);肝脏组织点状
饮水;3 分(轻度):出现偶尔且短暂(5~10 s)的驼背 坏死伴中央静脉炎性细胞浸润(3 分);肝脏实质细
姿势,能够自然恢复正常,并且有自发的快速活动, 胞片状坏死(4分)。采用Image J软件对肝组织炎症
穿插着进食和饮水;2 分(轻中度):出现较长时间 病灶数量及组织面积进行统计。
(>20 s)的驼背姿势,能够自然恢复正常,并伴有持 1.2.8 原代肝细胞分离提取、培养及处理
续自发的快速活动,穿插着进食和饮水;1 分(中重 使用本课题组先前所描述的方法从 6~8 周龄
度):持续驼背,只有在受到强烈外部刺激时才会活 WT鼠中分离原代肝细胞 [16] 。用Hank’s缓冲盐溶液
动;0 分(重度):持续驼背,不活动。如果小鼠观察 通过门静脉原位灌注肝脏,然后使用 0.06%的Ⅳ型
期间内出现两种状态,则使用0.5分作为间隔。 胶原酶灌注消化肝脏。收集肝脏消化物并以 50 g
1.2.4 血压测量 离心3 min,将含有肝细胞的沉淀重悬后铺在有胶原
LPS 或 NS 作用 6 h 后使用 ALC⁃NIBP 无创血压 包备的细胞培养板上。肝细胞在含有 10%胎牛血
测量仪系统测量小鼠收缩压(systolic blood pressure, 清的 DMEM 中培养 16 h 后,进行 Hspa12a 或阴性对
SBP)。将传感器套在小鼠尾部,通过充气、放气对 照(NC)腺病毒转染,24 h后使用LPS(500 ng/mL)或