Page 9 - 《南京医科大学学报》2026年第1期
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第46卷第1期 徐 甲,厉梦琪,袁小琴. 肿瘤相关成纤维细胞分泌THBS2通过PI3K/AKT通路驱动巨噬
2026年1月 细胞M2极化促进结直肠癌进展[J]. 南京医科大学学报(自然科学版),2026,46(1):1-13 · 3 ·
DMEM 培养基中培养。所有细胞均置于 37 ℃、5% 达水平,引物序列见表1。
CO2的加湿培养箱中培养。 表1 PCR引物序列
1.2.2 细胞转染 Table 1 Sequences of PCR primers
根据 LipoGene 2000 转染试剂说明书,将含有 Gene Primer sequence(5’→3’)
TM
THBS2的siRNA加入LipoGene 2000转染溶液中制 β⁃actin Forward:TCATGAAGTGTGACGTGGACAT
TM
备 siRNA⁃脂质体复合物,室温孵育 20 min,然后将 Reverse:CTCAGGAGGAGCAATGATCTTG
siRNA⁃脂质体复合物加入 CAF 细胞中,37 ℃培养 IL⁃1β Forward:AGCTACGAATCTCCGACCAC
6 h后,更换为DMEM完全培养基,继续培养48 h。 Reverse:CGTTATCCCATGTGTCGAAGAA
1.2.3 条件培养基的收取 IL⁃6 Forward:GGACAACTCAGGGATGCAAT
Reverse:GCAGAAGAGAGCCAACCAAC
将 NF 和 CAF 细胞以 3×10 个/孔的浓度接种在
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TNF⁃α Forward:CCTCTCTCTAATCAGCCCTCTG
6 孔板中。6~8 h 后,更换为含有 4%胎牛血清的
Reverse:GAGGACCTGGGAGTAGATGAG
DMEM培养基,并于24 h后收集细胞上清;收集转染
IL⁃10 Forward:AAGCCTGACCACGCTTTCTA
了THBS2⁃siRNA 48 h后的CAF细胞上清。所有上清 Reverse:ATGAAGTGGTTGGGGAATGA
均用0.22 μm滤器过滤,分装后于-80 ℃冰箱保存。 CD206 Forward:TGACGAATTGTGGATCGGCT
1.2.4 巨噬细胞极化诱导实验 Reverse:CCAGTACCCATCCTTGCCTT
THP⁃1细胞以5×10 个/孔的浓度接种在24孔板 ARG1 Forward:TGGACAGACTAGGAATTGGCA
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中,加入100 ng/mL PMA 诱导24 h,使THP⁃1细胞分 Reverse:CCAGTCCGTCAACATCAAAACT
THBS2 Forward:CCGCCTACCGTTTTGTACG
化为贴壁巨噬细胞,按照以下分组进行相关刺激。
Reverse:CTGGGCCATTGGACACAATCT
单一刺激因子组:LPS 组(100 ng/mL LPS)、IL⁃4 组
(20 ng/mL IL⁃4)。条件培养基处理组:NF上清诱导 1.2.7 ELISA实验
组(NF⁃CM),将NF上清与RPMI 1640完全培养基以 收取CAF与NF培养基上清,700 g离心5 min去
1∶1 混合;CAF 上清诱导组(CAF⁃CM):将 CAF 上清 除杂质及细胞碎片,按照人THBS2 ELISA 试剂盒说
与RPMI 1640完全培养基以1∶1混合。组合刺激组: 明,检测 THBS2 的水平。首先,将 100 μL 捕获抗体
THBS2+IL⁃4 组(100 ng/mL THBS2+20 ng/mL IL⁃4); 加入 96 孔板中,4 ℃包被过夜,弃去液体,洗涤液清
THBS2 + LPS 组(100 ng/mL THBS2 + 100 ng/mL 洗 3 次。随后将梯度稀释的标准品和待测样本在
LPS)。敲低处理组:si⁃2⁃CM组,THBS2敲低CAF上 37 ℃孵育 1 h。洗涤后每孔加入 50 μL 生物素标记
清1∶1混合RPMI 1640培养基;si⁃3⁃CM组:THBS2敲 的检测抗体,室温避光孵育2 h洗涤后,加入100 μL
低 CAF 上清 1∶1 混合 RPMI 1640 培养基;si⁃nc⁃CM 链霉亲和素⁃HRP工作液,室温避光孵育1 h。加入显
组:对照 CAF 上清 1∶1 混合 RPMI 1640 培养基。所 色液,室温避光孵育30 min后,用50 μL终止液终止
有分组细胞均在相应处理条件下继续培养24 h。 反应,使用酶标仪在450 nm处测定样品吸光度。最
1.2.5 巨噬细胞迁移实验 后,绘制标准曲线并计算待测样品中THBS2的含量。
将 2×10 个 PMA 刺激后的 THP⁃1 细胞接种于 1.2.8 Western blot检测
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Transwell 上室,并使用不同条件培养基(NF⁃CM、 使用配制好的蛋白裂解液(RIPA∶PI∶PMSF=100∶
CAF⁃CM)处理,同 1.2.4 节;对照组(PBS)及 THBS2 1∶1)裂解细胞沉淀,冰上静置30 min后13 000 r/min
组(100 ng/mL THBS2)、THBS2 敲 低 CAF 上 清 组 4 ℃离心 15 min,提取蛋白上清并用 BCA 法进行定
(si⁃2⁃CM、si⁃3⁃CM)和对照CAF上清组(si⁃nc⁃CM)处 量,100 ℃金属浴5 min,使蛋白变性后置于-80 ℃保
理同 1.2.4 节,对下室进行处理,36 h 后取出小室进 存。将等量蛋白样本在 10%SDS⁃PAGE 中电泳,然
行固定染色,清洗拍照。 后将蛋白转移至PVDF 膜,5%脱脂牛奶在室温封闭
1.2.6 qRT⁃PCR实验 1 h,加入PI3K抗体、p⁃PI3K抗体、Akt抗体、p⁃Akt抗
分别收集各组细胞,Trizol 法提取总 RNA,并按 体、THBS2抗体、α⁃SMA抗体、FAP抗体、Vimentin抗
试剂盒说明书逆转为 cDNA。随后用 SYBR Green 体、GAPDH抗体、β⁃actin抗体,4 ℃孵育过夜。TBST
Mix 试剂配制 qRT⁃PCR 反应体系,在实时荧光定量 洗涤后,加入相应特异性二抗(1∶10 000),摇床室温
PCR仪上设定反应程序并进行PCR检测。以β⁃actin 反应1 h。洗膜后,滴加ECL化学发光液于暗室中显
-ΔΔCT 法计算各靶基因的mRNA表 影、曝光。使用 Image J 软件(Version 1.5.3)进行定
为内参基因,采用2

