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第41卷第11期                       谭 磊,陈明月,沈       彬. 基因编辑研究进展与展望[J].
                 2021年11月                    南京医科大学学报(自然科学版),2021,41(11):1689-1694                      ·1691 ·


                2.3.2 光调控                                         Cas9的免疫原性也增加了临床使用的风险。另外,
                    通过光激活的方式也可以对Cas9活性进行精确                        体外合成的gRNA也会引发免疫反应                [44] ,对gRNA进
                调控。光调控是非入侵性的,可以实现对Cas9核酸                          行修饰可以增加稳定性,抑制免疫反应 。
                                                                                                    [45]
                酶活性的可逆控制。Hemphill等 使用光锁定赖氨                            虽然在Cas9的安全性方面已经做了诸多改进,
                                             [35]
                酸,设计出了一种光控Cas9,通过在细胞中添加进化                         但一些未知及潜在的安全性问题仍是 Cas9 编辑技
                                                          [36]
                产生的吡咯酰tRNA(PylT)/tRNA合成酶(PCKRS) ,                 术走向临床应用的障碍,因此开发易调控 Cas9 突
                可以使光锁定赖氨酸特异性地掺入 Cas9 中。这种                         变体、抑制 TP53 激活的 Cas9 突变体、低免疫原性
                光控的 Cas9 核酸酶在 365 nm 光照射 120 s 后,其活               Cas9 突变体等可以为基因治疗提供更安全、更有
                性可以恢复到野生型水平。Nihongaki 等              [37] 报道了     效的工具。
                一种光激活Cas9(paCas9),利用一种光诱导二聚化蛋
                                                                  3  基因编辑器的在体转导
                白 ,将Cas9的两个片段分别连接磁性蛋白的正负
                  [38]
                极,在蓝光照射下,异源二聚体相互配对,重组的pa⁃                             高效的基因编辑取决于将编辑器有效地传递
                Cas9与野生型Cas9活性没有显著差异。                             到体内细胞和组织中,在体转导对基因编辑来说是一
                    此外,Zhang 等   [39] 报道了一种通过光控 crRNA             个很大的挑战。目前大多数研究使用腺相关病毒
                来调控 CRISPR⁃Cas9 活性的方法,这一策略将维生                    (Adeno associated virus,AAV)和慢病毒进行在体转
                素 E 与 5′ 不 耐 光 连 接 子 偶 联 合 成 了 一 种 新 的            导基因编辑,存在以下问题:①病毒载体的容量有限;

                crRNA,维生素 E 修饰会抑制 Cas9⁃crRNA/tracrRNA             ②持续性的表达会造成脱靶效应;③递送载体本身会
                与DNA的结合,在365 nm紫外光照射下,维生素E和                       引发独特的免疫反应;④潜在的致癌性。
                不耐光接头被去除,恢复CRISPR⁃Cas9系统的功能。                          AAV 载体可以携带约 4.4 kb 的外源 DNA,具有
                2.3.3 小分子抑制剂                                      多种血清型,对不同组织具有不同的亲和性                      [46-47] 。
                    Choudhary 实验室开发了一种高通量筛选平                      使用分子量更小的 SaCas9 或将 SpCas9/碱基编辑器
                台 [40] ,鉴定出一种小分子 SpCas9 抑制剂 BRD0539,              分成两部分,再通过内含子蛋白剪接系统重组克服
                对这种抑制剂进行优化后可以将 SpCas9 的活性降                        了运载能力的限制         [48-49] 。当然,从自然界中或者通
                低78%。BRD0593调控Cas9的活性是可逆的,并且                      过蛋白工程,寻找或者开发更小版本的 Cas 蛋白是
                对蛋白酶有抵抗力,可在人血浆中稳定存在,其对                            解决 AAV 运载限制更好的选择            [50] 。AAV 的另一个
                CRISPR⁃Cas9 进行精准地时空调控,具有广阔的应                      缺点是对天然血清型存在先天性体液免疫反应,这
                用前景。                                              很大程度上限制了其应用            [51] ,通过对AAV的衣壳进
                                                                                         [52]
                2.4  P53效应与免疫原性                                   行改造可以减轻这一影响 。
                    CRISPR⁃Cas9的细胞毒性在不同细胞系中有所                         慢病毒载体可以容纳长达10 kb的外源DNA ,
                                                                                                             [53]
                不同,这种毒性与细胞中 P53 蛋白介导的细胞凋亡                         并将其半随机整合到基因组中。慢病毒可以与不
                通路相关。在对人细胞系转染Cas9后,携带野生型                          同包膜蛋白进行组装,以靶向不同的细胞类型                       [54] 。
                TP53 基因的细胞系表现出更高的细胞周期停滞水                          与AAV不同的是,慢病毒携带的基因会整合到细胞
                平 [41] 。Enache 等 [16] 发现,在人类癌细胞系中引入               基因组中,由此产生的核酸酶长期表达对细胞不

                Cas9 会导致 p53 通路的上调,诱导细胞凋亡。Ihry                    利。整合酶缺陷慢病毒载体具有瞬时表达和更弱
                等 [42] 在对人类多能干细胞进行编辑时,Cas9诱导的                     的整合能力,可以解决这一问题               [55] 。最近,有研究
                双链断裂会让大多数细胞死亡,这种细胞毒性主要                            开 发 了 一 种 类 病 毒 载 体 ,可 以 直 接 包 装 Cas9
                依赖于 TP53 激活,所以大大降低了携带野生型                          mRNA,使其不会整合到靶细胞的基因组中,可以在
                                                                                                 [56]
                TP53细胞的基因编辑效率,也就意味着如果使用经                          小鼠组织中转导和瞬时表达核酸酶 。
                过筛选的编辑细胞用于细胞治疗,这些细胞TP53突                              由于病毒载体存在一些难以避免的缺陷,目前
                变或者低表达,可能会导致癌症的发生。因此在利                            也开发了一些非病毒传递载体               [57] 。基因编辑器的
                用基因编辑细胞进行治疗时,监测TP53的状态尤为                          非病毒载体传递效率低于病毒载体,但是它提供了
                重要。除了引起P53效应,Charlesworth 等          [43] 对人类     瞬时核酸酶活性的优势。更重要的是,非病毒载
                血清进行免疫印迹检测时发现,34例捐赠者中至少                           体,如脂质纳米颗粒、电穿孔技术等可以重复多次
                一半人的血清中含有 SaCas9 和 SpCas9 抗体,因此                   给药 ,这也为基因疾病治疗提供了更多的可能。
                                                                      [58]
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