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第41卷第3期 周阳春,章 静,朱 峰. 水通道蛋白3参与缺氧介导的结直肠癌化疗耐药的机制研究[J].
2021年3月 南京医科大学学报(自然科学版),2021,41(03):344-348 ·345 ·
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疗、化学药物治疗以及分子靶向治疗等 ,而肿瘤细 2 mL无抗生素的培养基,混匀,置于37 ℃、5%CO2培
胞对化疗不敏感常导致CRC治疗失败,严重影响患 养箱培养,1 d 后进行干扰实验。20 μmol/L siRNA
者预后 。因此,深入研究CRC化疗耐药机制,降低 10 μL加至250 μL不含血清的Opti⁃MEM培养基,轻
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CRC对化疗药物的耐药性,对提高CRC患者的预后 轻 混 匀 ,室 温 孵 育 5 min。 5 μL 的 Lipofectamine
具有十分重要的意义。 2000 加至 250 μL 不含血清的 Opti⁃MEM 培养基,轻
缺氧是实体肿瘤微环境的主要特征,且是肿瘤 轻混匀,室温孵育 5 min。再将两种悬液轻轻混合,
预后的独立危险因素 。缺氧可导致肿瘤细胞生物 室温孵育20 min。将上述混合液加入到1.5 mL无抗
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学行为变化,诸如细胞存活、代谢重组、血管生成、基 生素培养基中,培养细胞24 h后,弃去上层液体,更
因组稳定性的改变 [5-7] 。越来越多的研究发现缺氧参 换新鲜培养基,继续培养48~96 h。
与肿瘤化疗耐药的产生,然而其机制仍不清楚 [8-10] 。 1.2.3 实时荧光定量PCR实验
水通道蛋白 3(aquaporin 3,AQP3)是水通道蛋 采用TRIzol试剂提取细胞RNA,利用RNA逆转
白家族成员之一,具有介导渗透压依赖性跨生物膜 录试剂盒逆转成 cDNA,实时荧光定量 PCR 检测
水转运的作用,对 H2O2、甘油等小分子物质亦具有 AQP3 mRNA 表达水平变化。相关引物序列:AQP3
通透性 [11-13] 。诸多研究发现 AQP3 参与肿瘤化疗耐 上游引物 5′⁃CCGTGACCTTTGCCATGTG⁃3′,下游引
药 [14-16] 。文献研究证实CRC组织AQP3表达显著上 物 5′⁃CGAAGTGCCAGATTGCATCATAA⁃3′;HIF⁃1α
调,且促进 CRC 细胞增殖、迁移 [17] ,但 AQP3 是否参 上游引物 5′⁃TAGCCGAGGAAGAACTATGAAC⁃3′,
与 CRC 化疗耐药尚不清楚。Hoogewijs 等 [18] 发现缺 下 游 引 物 5′ ⁃ CTGAGGTTGGTTACTGTTGGTA ⁃ 3′ ;
氧可上调纤维肉瘤 L929 细胞 AQP3 表达;然而缺氧 GAPDH 上 游 引 物 5′ ⁃ CGCTGAGTA CGTCGTG⁃
是否可以上调CRC中AQP3表达尚不清楚。我们前 GAGTC⁃3′,下游引物 5′⁃GCTGATGATCTTGAGGCT⁃
期研究发现缺氧可上调 HCT116 和 HT29 细胞中 GTTGTC⁃3′。每组实验重复 3 遍。PCR 扩增条件:
AQP3表达,因此推测缺氧可能通过AQP3介导CRC 95 ℃ 30 s 预变性,95 ℃ 6 s,60 ℃ 30 s,40 个循环。
化疗耐药。 在 AB17300 系统中检测目的基因和相应内参的 Ct
值,每组实验重复3遍。
1 材料和方法
1.2.4 Western blot实验
1.1 材料 BCA 法测定细胞裂解物的蛋白含量,取等量蛋
人 CRC 细胞系 HCT116、HT29 细胞(中国科学 白质用 SDS⁃PAGE 法分离,并转移至 PVDF 膜上,加
院上海细胞库);5⁃Fu(Sigma 公司,德国);转染试剂 单克隆抗体于 4 ℃下过夜孵育,TBST 洗去一抗,加
Lipofectamine2000、TRIzol 试剂(Invitrogen 公司,美 二抗于室温孵育2 h,TBST洗去二抗,洗涤后以ECL
国);RNA 逆转录试剂盒(TaKaRa 公司,日本);HIF⁃ 试剂盒显示免疫印迹条带,以GAPDH作为内参。
1α⁃siRNA、AQP3⁃siRNA(上海吉凯基因);AQP3 抗 1.2.5 细胞活力实验
体(Santa Cruz 公司,美国);HIF⁃1α抗体、GAPDH 抗 CCK⁃8检测细胞活力。96孔板每孔加入1×10 个
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体(CST公司,美国);BCA试剂盒、抗兔或抗鼠二抗、 细胞,37 ℃ 温箱培养,24 h 后加入 0、20、40、60、80、
细胞活性 CCK⁃8 检测试剂盒(杭州碧云天公司)。 100 μg/mL 5⁃Fu 作用 24 h,每组均设置 3 个平行样。
RPMI1640 培养基、Opti⁃MEM 培养基(Life Technolo⁃ 每孔加入 10 μL CCK⁃8 试剂,在细胞培养箱中继续
gies公司,美国)。 孵育2 h,再用酶标仪检测,检测波长450 nm。
1.2 方法 1.2.6 平板克隆形成实验
1.2.1 细胞培养 平板克隆形成实验评价细胞集落形成能力,将
HCT116、HT29 细 胞 加 入 RPMI1640 培 养 基 + 1 000 个细胞种植于 6 孔板中,培养 14 d 后,用甲醛
10%胎牛血清,加入 100 U/mL 的青霉素和 100 mg/L 固定结晶紫染色后计数进行评价。
的链霉素,于 37 ℃、5% CO2恒温孵箱中常规培养。 1.3 统计学方法
缺氧条件下细胞培养是将细胞置于密封缺氧箱内 采用 SPSS 20.0 软件处理分析实验数据。计量
(含有1% O2 )。 数据以均数±标准差(x ± s)表示。两组独立数据采
1.2.2 RNA干扰实验 用t检验分析组间差异;多组数据(同一研究对象在
取对数生长 2×10 个细胞接种于 6 孔板,加入 不同时间点的测量数据)采用重复测量方差分析总
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