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第41卷第9期        彭丽瑶,魏桂红,黄张建,等. CDDO⁃Me对缺氧诱导的肺动脉外膜成纤维细胞活化的影响[J].
                  2021年9月                    南京医科大学学报(自然科学版),2021,41(09):1273-1280                      ·1275 ·


                1%O2缺氧箱中处理。CDDO⁃Me在放入缺氧箱前1 h                      血清培养基洗涤细胞 3 次,置于荧光显微镜下观察
                加入。                                               拍照。
                1.2.2 CCK⁃8法检测细胞活力                                    GSH、MDA 和 SOD 检测:按照 1.2.5 方法收集细
                    收集对数生长期的人PAAF,按每孔1×10 个细                      胞裂解液,按照试剂盒说明书操作,GSH 检测在
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                胞接种于 96 孔板,常规培养 24 h 后弃培养基,按照                     412 nm 波长处测定吸光度、MDA 检测在 532 nm 波
                分组分别加入无血清培养基和无血清培养基配制                             长处测定吸光度、SOD检测在450 nm波长处测定吸
                的不同浓度CDDO⁃Me工作液。1 h后,将缺氧组及缺                       光度。
                氧+CDDO⁃Me组置入缺氧箱中培养。24 h后,弃培养                      1.2.7 酶联免疫吸附实验(ELISA)
                基,每孔加入含10% CCK⁃8原液的培养基100 μL,孵                        人 PAAF 以 5×10 个/孔的密度接种于 24 孔板
                                                                                      4
                育 4 h,应用酶标仪于 450 nm 波长处检测吸光度。                     中,隔天弃去培养基,药物处理1 h后分别置入不同
                细胞活性=(实验组吸光度值-空白组吸光度值)/(对                         培养箱培养,药物处理24 h后收集细胞上清,-80 ℃
                照组吸光度值-空白组吸光度值)×100%。                             保存备用。取出细胞上清和ELISA检测试剂盒室温
                1.2.3 Transwell迁移实验                               复温30 min,按照试剂盒说明书操作,应用酶标仪于
                    收集对数生长期的人PAAF,PBS洗涤3遍后用                       450 nm 波长处检测各孔吸光度值。应用 CurveEx⁃
                无血清培养基将其重悬制成 1×10 个/mL 的细胞悬                       pert 软件制作标准曲线,根据样本吸光度值计算细
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                液,在 Transwell 上室中加入 100 μL 细胞悬液,下室                胞因子浓度。
                中加入 600 μL 含所需药物的完全培养基。根据分                        1.3 统计学方法
                组,置于不同培养箱培养。24 h后取出小室,弃去上                             采用SPSS 22.0统计软件进行分析,所有数据以
                室培养基,用棉签擦去小室膜上层细胞,多聚甲醛                            均数±标准误(x ± sx )表示,多组间样本统计分析采
                固定,PBS 洗涤,结晶紫染色后于显微镜下观察,使                         用单因素方差分析(one⁃way ANOVA),组间两两比
                用 Image⁃Pro Plus 图像分析软件分析每组迁移至下                   较采用LSD法。P < 0.05为差异有统计学意义。
                室的细胞所占面积,计算细胞相对迁移率。
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                1.2.4 细胞免疫荧光分析
                    人PAAF以5×10 个/孔的密度接种于24孔板细                     2.1  CDDO⁃Me 对缺氧诱导的 PAAF 细胞活力和迁
                                   4
                胞爬片上,隔天弃去培养基,药物处理1 h后分别置                          移的影响
                于不同培养箱中培养24 h,PBS清洗后多聚甲醛固定                            CCK⁃8实验结果显示,在常氧条件下,500.0 nmol/L
                30 min,0.5% TritonX⁃100 PBS液洗涤20 min,5% BSA       及以下浓度的 CDDO⁃Me 对细胞活力的影响与对照
                室温封闭1 h,随后加入一抗α⁃SMA、p65(1∶200),置                  组相比差异无统计学意义(P > 0.05,图 1A),表明
                于4 ℃冰箱孵育过夜,PBS清洗3次后加入免疫荧光                         500.0 nmol/L 及以下浓度的CDDO⁃Me 对PAAF 无细
                二抗(1∶1 000),置于室温孵育1 h。PBS清洗后每孔                    胞毒性。缺氧刺激 24 h 可以显著增强 PAAF 细胞
                加入Hoechst 33342染核30 min,PBS清洗后用抗荧光                活力,与常氧组相比差异有统计学意义(P < 0.05,
                淬灭液封片,在荧光显微镜下观察拍照。                                图 1B);CDDO⁃Me 可以浓度依赖性地降低缺氧诱
                1.2.5 Western blot                                导的 PAAF 细胞活力的升高,并在 250.0 nmol/L 和
                    收集处理后的人PAAF,PBS洗3遍后加入预冷                       500.0 nmol/L 浓度时具有显著抑制作用(P < 0.05),
                的RIPA裂解液提取细胞总蛋白。常规SDS⁃PAGE凝                       故使用 500.0 nmol/L 的 CDDO⁃Me 进行后续研究。
                胶电泳、湿法转膜,5%脱脂奶粉溶液室温封闭1 h,随                        Transwell 迁移实验结果显示,与常氧组相比,缺氧
                后加入一抗(1∶1 000)置于 4 ℃冰箱孵育过夜。                       组细胞迁移数量显著增加,而缺氧+CDDO⁃Me 组细
                TBST 洗膜后加入二抗(1∶8 000),室温孵育 1 h,洗                  胞迁移数量显著减少(P < 0.05,图 1C、D),提示
                膜后化学发光显影,使用Image Lab图像分析软件分                       CDDO⁃Me 可以显著抑制缺氧诱导的 PAAF 迁移。
                析蛋白表达量。                                           上述结果表明,缺氧可以诱导 PAAF 细胞活力和迁
                1.2.6 氧化应激水平检测                                    移能力增强,而 CDDO⁃Me可以显著抑制上述改变。
                    ROS 检测:按照 1.2.4 方法培养细胞,24 h 后弃                2.2  CDDO⁃Me 对缺氧诱导的 PAAF 向肌成纤维细

                去培养基,每孔加入无血清培养基稀释的DCFH⁃DA                         胞转化的影响
               (10 μmol/L),37 ℃细胞培养箱内孵育20 min。用无                      细胞形态学结果显示(图 2A),在常氧条件下
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