Page 8 - 南京医科大学学报自然科学版
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第43卷第6期
               ·750 ·                            南 京    医 科 大 学 学         报                        2023年6月


              RISC) [6- 7] ,再释放 siRNA 的随从链从而激活 RISC。            级)雄性小鼠(南京医科大学实验动物中心),本研
              激活后的RISC在siRNA的引导链的指导下降解其同                        究经南京医科大学实验动物福利伦理委员会批
                                                  [8]
              源互补的mRNA,从而沉默特定基因的表达 。shRNA                       准。Oligo(上海生工公司);限制性内切酶 BglⅡ、
             (short hairpin RNA)载体在细胞核内转录为pri⁃shRNA             HindⅢ、XbaⅠ、XhoⅠ、CutSmart Buffer、10×NEB Buf⁃
             (primary shRNA),然后在双链RNA结合蛋白DGCR8                  fer3.1(NEB 公司,美国);FastPure Gel DNA Extrac⁃
              和 Drosha 蛋白的加工下形成 pre⁃shRNA(precursor             tion Mini Kit(南 京 Vazyme 公 司);EndoFree Mini
              shRNA) 。pre⁃shRNA 在 Exportin⁃5 等蛋白因子的             Plasmid Kit Ⅱ(TIANGEN公司,美国);胰酶、胎牛血
                     [9]
              协助下从细胞核转运至细胞质                 [10] 。细胞质中的         清、DMEM(Gibco 公司,美国);琼脂糖(上海生工公
              pre⁃shRNA在Dicer酶等蛋白因子加工下去除其茎环                     司),TRIzol(Thermo Fisher Scientific 公司,美国);
              结构成为siRNA,从而启动RNAi过程来沉默目的基                        RT reagent Kit(TaKaRa 公司,日本);DAPI(Sigma 公
                    [11]
              因表达 。基于这一原理,有研究者设计靶向特定序                           司 ,美 国);花 生 凝 集 素(peanut agglutinin,PNA)
                                                        [12]
              列的shRNA敲降载体,从而诱导RNA特异性降解 。                        (Vector Labs公司,美国),EGFP抗体、Sox30抗体、二
                  传统的基因敲除动物模型一般使用 CRISPR/                       抗(Abclonal公司,美国)。
              Cas9 等基因编辑技术进行遗传学模型的构建                    [13] 。  1.2  方法
              即使 CRISPR/Cas9 技术经过多年发展已经趋于成                      1.2.1 Oligos退火形成双链
              熟,但仍存在耗时较长、费用较高、不能在特定时间                                将公司合成的 shSox30⁃oligo1 和 shSox30⁃oligo2
              点敲除目的基因,以及脱靶效应等诸多问题                    [14] 。同    用高压灭菌后的ddH2O溶解。按照4 μL oligo1、4 μL
              时,某些基因的敲除小鼠模型存在胚胎死亡现象,                            oligo2、2 μL 10×NEB buffer2、10 μL ddH2O配置退火体
              常导致实验人员无法得到敲除小鼠。为了规避这                             系。95 ℃水浴退火5 min,自然冷却至室温,4 ℃保存。
              些问题,需要研究者开发一个快速、特异、安全的睾                           1.2.2 载体线性化
              丸原位基因敲减平台。近些年来,很多研究通过向                                 空载环状的 pSilencer 载体按照 2 μg pSilencer
              睾丸递送 siRNA     [15] 或反义寡核苷酸(antisense oli⁃        载体、1 μL XbaⅠ内切酶、1 μL XhoⅠ内切酶、5 μL
                               [16]
              gonucleotides,ASO) 来完成睾丸特定基因的敲                    CutSmart Buffer,再 加 ddH2O 补 齐 至 50 μL 体 系 ,
              减。虽然向小鼠睾丸递送 siRNA 和 ASO 可以规避                      37 ℃水浴 3 h。将酶切后的产物在 1%琼脂糖凝胶
              CRISPR/Cas9等基因技术存在的问题,但也存在着作                      中电泳30 min,使用DNA凝胶回收试剂盒回收目的
              用时间维持较短的问题 。shRNA敲降载体具有表                          产物。空载的pSuper载体分两步进行酶切,先按照
                                   [17]
              达shRNA的元件,可以通过慢病毒整合到基因组上                          2 μg pSuper 载体、1 μL BglⅡ内切酶、5 μL 10×NEB
              稳定表达。研究者可以向小鼠睾丸递送shRNA慢病                          Buffer 3.1,加 ddH2O 补齐至 50 μL 体系,37 ℃水浴
              毒敲降载体基因来维持稳定、长效的基因表达沉默。                           3 h。线性产物使用试剂盒纯化后,再按照 2 μg
              本研究通过构建靶向Sox30基因的shRNA慢病毒敲                        pSuper线性载体、1 μL HindⅢ内切酶、5 μL 10×NEB
              降载体,通过网微注射进入出生24 d小鼠睾丸来敲降                         Buffer2.1,加 ddH2O 补齐至 50 μL 体系,37 ℃水浴
              Sox30基因转录本,观察Sox30蛋白是否可被持续敲                       3 h。1%琼脂糖凝胶中电泳30 min,使用DNA凝胶回
              降,及生精管腔中生殖细胞是否有发育异常现象。                            收试剂盒纯化产物得到双酶切的线性pSuper产物。
                                                                同样地,pSuper⁃shSox30按照pSuper酶切体系酶切。
              1  材料和方法
                                                                1.2.3  pSuper⁃shSox30 与 pSliencer⁃GFP⁃shSox30 的
              1.1  材料                                           连接与鉴定
                  实验所使用的小鼠均为 24 日龄 C57BL/6J(SPF                      20 ng线性pSuper载体、1 μL 10×T4 Buffer、1 μL
                                                    表1 shSox30核苷酸序列
                                           Table 1 The oligonucleotide sequences of shSox30

                    基因                                            序列(5′→3′)
               shSox30⁃1⁃Oligo1  GATCCCCGCCTTCTGAGTTGATACGGTTTTCAAGAGAAACCGTATCAACTCAGAAGGCTTTTTGGAAA
               shSox30⁃1⁃Oligo2  AGCTTTTCCAAAAAGCCTTCTGAGTTGATACGGTTTCTCTTGAAAACCGTATCAACTCAGAAGGCGGG
               shSox30⁃2⁃Oligo1  GATCCCCCCTTTCAGAGACTATCCAGATTTCAAGAGAATCTGGATAGTCTCTGAAAGGTTTTTGGAAA
               shSox30⁃2⁃Oligo2  AGCTTTTCCAAAAACCTTTCAGAGACTATCCAGATTCTCTTGAAATCTGGATAGTCTCTGAAAGGGGG
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