Page 9 - 南京医科大学学报自然科学版
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第43卷第9期 邓 惠,陈格格,徐 莉,等. 4⁃羟基水杨酰苯胺对T淋巴细胞白血病肿瘤增殖与凋亡的影响[J].
2023年9月 南京医科大学学报(自然科学版),2023,43(9):1185-1193 ·1187 ·
染液1 mL,室温避光染色1 h后吸走残余染液,拍照 防荧光淬灭剂封片后,激光扫描共聚焦显微镜观察
并计算克隆形成数。 γ⁃H2AX阳性细胞,并拍照。
1.2.4 细胞周期检测 1.2.8 裸鼠移植瘤与HDS的抗肿瘤活性检测
收集对数生长期的 Jurkat 和 Hut⁃78 细胞,配成 收集对数生长期的 Jurkat 细胞,无菌 PBS 清洗
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5 5 2 次并用其配成密度为 2×10 个/mL 的细胞悬液,与
密度为2×10 ~3×10 个/mL的细胞悬液,按每孔1 mL
接种至 24 孔板中,用不同浓度的 HDS 药物处理,放 基质胶按体积比1∶1混匀置于冰上备用。裸鼠注射
入培养箱培养;至处理时间点时收集细胞至流式管 部位消毒后,用 1 mL 注射器抽取细胞悬液,皮下注
中,按照“先慢后快”的原则,逐滴向每管加入 1 mL 射 100 μL,定期观察裸鼠情况。待移植瘤长至约
预冷(-20 ℃)的 70%乙醇,-20 ℃固定至少 12 h,检 0.5 cm×0.5 cm时,将裸鼠随机分为对照组和HDS处
测当天离心并用 PBS 清洗 1 遍后,每管加 300 μL 的 理组。HDS处理组腹腔注射HDS 100 mg/(kg·d),对
细胞周期检测试剂 PI/RNase,室温避光孵育 30 min 照组注射同体积的溶剂DMSO。每日记录裸鼠移植
后,用流式细胞仪检测。 瘤的大小,至实验结束,裸鼠安乐死后,剥离皮下肿
1.2.5 细胞凋亡检测 瘤组织,并收集裸鼠心脏、肝脏和肾脏组织,在 4%
收集对数生长期的 Jurkat 和 Hut⁃78 细胞,配成 多聚甲醛中固定备用。
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密度为2×10 ~3×10 个/mL的细胞悬液,按每孔1 mL 1.3 统计学方法
接种至24孔板中,每孔按不同浓度加入HDS药物处 采用SPSS 20.0进行统计分析。数据以均数±标
理,放入培养箱培养;至处理时间点时收集细胞至流 准差(x ± s)表示;实验组与对照组间比较采用 Stu⁃
式管中,每管加入 2.5 μL Annexin⁃V⁃FITC 和 50 μL dent’s t 检验;多组比较采用单因素方差分析(one⁃
1× Binding Buffer,室温避光染色 15 min;每管加入 way ANOVA),各组之间的两两比较采用 SNK 法。
5 μL PI 和 250 μL 1× Binding Buffer,室温避光染色 P < 0.05为差异有统计学意义。
5 min 后,用流式细胞仪检测。读取数据,计算细胞
2 结 果
凋亡百分比。
1.2.6 Western blot检测 2.1 HDS 可抑制 T 淋巴细胞白血病细胞的增殖和
收集对数生长期的 Jurkat 和 Hut⁃78 细胞,配成 克隆形成
密度为2×10 ~3×10 个/mL的细胞悬液,按不同浓度 HDS 是一种临床批准的药物,其相对分子量为
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加入 HDS 药物处理 48 h 后,用 RIPA 蛋白裂解液提 229.24 Da(图 1A)。为了确定 HDS 是否具有抗 T 淋
取细胞总蛋白并进行蛋白定量,加入 SDS⁃PAGE 蛋 巴细胞白血病肿瘤的能力,将不同浓度的 HDS(0、
白上样缓冲液,取 20 μL 蛋白进行 SDS⁃PAGE 电泳 25、50、75、100、150、200、300、400 μmol/L)分别作用
后转移于硝化纤维素(NC)微孔滤膜,5% BSA 封闭 于 T 淋巴细胞白血病细胞株 Jurkat 和 Hut⁃78 细胞
1 h 后进行抗体孵育(4 ℃冰箱过夜)。次日用 PBST 24、48、72 h。HDS对T淋巴细胞白血病细胞株有细
清洗 NC 膜 3 遍以后,根据一抗种属进行二抗孵育 胞毒性,且表现出剂量和时间依赖性(图 1B、C)。
(室温,1 h),再用PBST清洗3遍。Amersham Imager HDS作用48 h后,Jurkat和Hut⁃78细胞半数抑制浓度
600 自动化学发光凝胶成像仪曝光检测并保存图 (IC50 值)分 别 为 151.18 μmol/L 和 173.67 μmol/L。
片,用Image J软件对图片进行分析。 琼脂集落形成法检测不同浓度的 HDS 对 Jurkat 和
1.2.7 γ⁃H2AX免疫荧光法 Hut⁃78 细胞集落形成能力的影响。结果显示,HDS
收集对数生长期的 Jurkat 和 Hut⁃78 细胞,配成 可显著抑制两种细胞系的集落形成,且集落形成数
密度为2×10 ~3×10 个/mL的细胞悬液,按不同浓度 与药物浓度呈负相关(图1D、E)。
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加入HDS药物处理48 h后,用PBS清洗1次,按细胞 2.2 HDS 可诱导 T 淋巴细胞白血病细胞停滞于细
沉淀∶PBS=1∶20(体积比)的比例加入适量PBS重悬 胞周期S期
细胞,混匀后每个样品取 50 μL 均匀涂片于正电荷 为探讨HDS对T淋巴细胞白血病细胞细胞周期
黏附防脱载玻片上(涂片面积约为 1 cm×1 cm),经 的影响,用不同浓度的 HDS 作用于 Jurkat 和 Hut⁃78
4%多聚甲醛固定、0.5% Triton X⁃100 破膜、0.5% 细胞(0、100、300 μmol/L)48 h,然后用碘化丙啶(PI)
BSA 封闭、一抗γ⁃H2AX 抗体孵育(4 ℃冰箱过夜)、 染色和流式细胞术分析细胞周期。结果显示,处于
R488标记的二抗孵育(室温,1 h)、DAPI孵育10 min、 S期的Jurkat(图2A)和Hut⁃78(图2B)细胞群比例逐