Page 28 - 南京医科大学自然版
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第44卷第9期
·1200 · 南 京 医 科 大 学 学 报 2024年9月
激 GMC 诱导 IL⁃23 表达的影响,拟揭示 Thy⁃1N 大 30 min。行乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase,LDH)
鼠肾组织早期炎症的参与因素,为MsPGN的深入研 法检查GMC溶解的百分率(GMC溶解率<5%时被视
究提供必要的实验依据。 为形成了 sublytic C5b⁃9 复合物)。本实验确定以
5% ATS 与 4% NHS 作为形成 sublytic C5b⁃9 的最佳
1 材料和方法
剂量。
1.1 材料 1.2.4 质粒转染与表达验证
雄性SD大鼠(180~200 g)来源于南京医科大学 用 Lipofectamine 2000 将 shCTR 质粒转染 GMC,
实验动物中心,动物实验操作经南京医科大学实验 48 h后观察绿色荧光蛋白(green fluorescent protein,
动物伦理委员会批准(IACUC⁃2011007)。大鼠GMC GFP)的表达,以评估其转染效率。之后,同法给
细胞株HBZY⁃1由武汉大学中国典型培养物保藏中 GMC 转染 pIRES2⁃EGFP 或 pIRES2⁃KLF5 质粒 48 h,
心提供。多克隆兔抗大鼠胸腺细胞血清(anti⁃thy⁃ 或转染 shCTR 或 shKLF5 质粒 48 h,再给予 sublytic
mocyte serum,ATS)由本实验室制备(用 56 ℃水浴 C5b⁃9 刺激 6 h。提取细胞蛋白,Western blot(WB)
30 min灭活补体)。正常人血清(normal human serum, 检测KLF5和IL⁃23的表达水平。
NHS)来源于30位健康志愿者。单克隆鼠源性KLF5 1.2.5 WB实验
和 IL⁃23 抗体(Santa Cruz 公司,美国),RIPA 裂解液 大鼠肾组织或 GMC 中加 RIPA 裂解液,离心收
(上海碧云天生物科技有限公司),Lipofectamine2000 集上清测定其蛋白浓度。然后,取 30 μg 蛋白上样
(Thermo Fisher Scientific 公司,美国),Hieff qPCR 于10%的SDS⁃PAGE中,先用50 V电泳30 min(浓缩
SYBR Green Master Mix(上海翊圣生物科技有限公 蛋白),再用120 V 电泳2 h。接着用0.3 A 恒流湿转
司),双荧光素酶报告基因检测试剂盒、pGL3⁃basic、 2 h。PVDF膜用脱脂牛奶封闭2 h,加KLF5或IL⁃23
pRL⁃SV40质粒(Promega公司,美国),pIRES2⁃EGFP 抗体,4 ℃孵育过夜。次日,用 TBST 洗涤 3 次,再用
质粒(Clontech 公司,美国)。IL⁃23 全长启动子荧光 HRP 标记的二抗室温孵育 1 h,最后加入 ECL 发光
素酶报告基因质粒(pGL3⁃IL⁃23⁃FL)、KLF5 过表达 液并予曝光。
质粒(pIRES2⁃KLF5)、KLF5 小干扰质粒(shKLF5)、 1.2.6 实时荧光定量PCR(RT⁃qPCR)
shRNA 对照质粒(shCTR)、慢病毒包装的 shKLF5 用 TRIzol 提 取 GMC 的 总 mRNA,逆 转 录 为
(LV⁃shKLF5)和shCTR(LV⁃shCTR)由本课题组前期 cDNA。另用Primer Premier 5软件设计大鼠IL⁃23的
分别委托通用生物(安徽)股份有限公司和上海吉 PCR 引物,并委托南京金斯瑞生物技术有限公司合
玛制药技术有限公司构建。 成。IL⁃23 引物序列是:上游,5′⁃TGTGCCTAGGAG⁃
1.2 方法 TAGCAGTC⁃3′,下游,5′⁃TCCATTTGTCCCACTGGT⁃
1.2.1 Thy⁃1N大鼠模型的复制 GT⁃3′。RT⁃qPCR反应体系为cDNA模板1 μL,Hieff
取雄性 SD 大鼠(180~200 g),经尾静脉注射含 qPCR SYBR Green Master Mix 10 μL,上下游引物各
Thy⁃1 抗体(Thy⁃1 antibody,Thy⁃1 Ab)的 ATS(剂量 0.4 μL,DEPC 水 补 足 至 20 μL。 在 ABI StepOne⁃
为0.75 mL/100 g),在注射后1、2、3、6、12 h取大鼠的 Plus TM PCR 仪上行扩增反应,程序为:保温阶段
肾组织(n=5/时间点),实验以0 h无处理的肾组织作 (95 ℃ 5 min)、循环阶段(95 ℃ 10 s、60 ℃ 30 s,共
对照。之后,提取肾组织中的蛋白质以检测目的蛋 40 个循环)和溶解曲线阶段(95 ℃ 15 s、60 ℃ 60 s、
白的表达。 95 ℃ 15 s)。每样本设 3 复孔,β⁃actin 做内参基因,
1.2.2 GMC的培养 采用2 -ΔΔCt 计算相对倍数。
将大鼠 GMC 细胞株接种于含 10%胎牛血清的 1.2.7 荧光素酶报告基因实验
MEM完全培养液中,37 ℃、5% CO2孵箱内培养48 h。 将 GMC 用 sublytic C5b ⁃ 9 刺 激 6 h,或 转 染
当细胞密度达 80%时,PBS 洗涤后予 0.25%胰蛋白 pIRES2⁃EGFP或pIRES2⁃KLF5质粒及pGL3⁃IL⁃23⁃FL
酶消化细胞。1 000 r/min 离心 5 min,弃去上清,再 联 同 pRL ⁃ SV40 内 参 质 粒 48 h。 另 将 shCTR 或
按1∶3比例稀释进行传代培养。 shKLF5 质粒与 pGL3⁃IL⁃23⁃FL 和 pRL⁃SV40 质粒共
1.2.3 Sublytic C5b⁃9刺激GMC的剂量 转染 GMC 48 h,再加 sublytic C5b⁃9 刺激 6 h(针对
采用棋盘滴定法 [8-10] ,即先以不同浓度的 ATS shCTR 或 shKLF5 转染组)。之后,用 1×被动裂解缓
致敏 GMC 30 min,再添加不同浓度的 NHS 孵育 冲液(passive lysis buffer,PLB)处理上述 GMC,行荧

