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第45卷第8期 刁庆飞,张 昊,杨春白雪,等. EZH2靶向FAK/F⁃actin/ROS信号通路影响结直肠癌进展的机制研究[J].
2025年8月 南京医科大学学报(自然科学版),2025,45(8):1110-1122 ·1113 ·
1.2 方法 于裸鼠左侧腋下。自接种当日起每天观察裸鼠状
1.2.1 细胞培养 态及肿瘤生长情况。裸鼠一般状况良好,在接种后
SW480 细胞和 SW620 细胞在含有 10% FBS 和 14 d观察到注射部位皮下有直径2~3 mm的肿瘤,表
1%青霉素⁃链霉素的 DMEM 培养基中培养,置入 示接种成功 [22] 。每天观察裸鼠状态、死亡情况及肿
37 ℃、5% CO2的加湿培养箱中,每 24 h 更换 1 次培 瘤生长情况,测量皮下移植瘤的最大长径(a)和横径
养基。待细胞密度>70%时,用0.25%胰蛋白酶进行 (b),计算移植瘤的体积。
传代。下述实验均采用第3代细胞进行实验。 1.2.5 Western blot检测
1.2.2 免疫组化检测 用含有蛋白酶抑制剂的 RIPA 裂解液从 SW480
收集人体结直肠癌组织和癌旁标本组织,先经 细胞中提取总蛋白,然后用BCA蛋白定量试剂盒进
10%福尔马林溶液固定 48 h,然后依次进行组织脱 行蛋白定量。使用 10% SDS⁃PAGE 对蛋白质进行
水、透明、浸蜡处理,将蜡块切成 6 μm 厚的切片,置 分离,将分离的蛋白质转移到 PVDF 膜上,用 5%脱
于 65 ℃烤箱中烤片 1 h。接着二甲苯脱蜡 15 min, 脂牛奶封闭后,用稀释的一抗EZH2抗体(1∶1 000)、
乙醇梯度性脱水(100%乙醇浸泡 10 min,95%乙醇 p⁃FAK 抗体(1∶1 000)、p⁃Paxillin 抗体(1∶1 000)、
浸泡 10 min,80%乙醇浸泡 10 min),然后用 1×PBS NOX2抗体(1∶5 000)、NOX4抗体(1∶1 000)、RUNX3
缓冲液冲洗 10 min,一共冲洗 3 次,采用离心机, 抗体(1∶1 000)、p⁃JNK 抗体(1∶1 000)和 GAPDH 抗
100 r/min 10 ℃,离心 10 min。后加入 3% H2O2室温 体(1∶1 000)分别 4 ℃孵育过夜,TBST 洗涤 3 次,加
孵育10 min,然后1×PBS缓冲液冲洗后甩干水分,加 入相应二抗室温孵育2 h,TBST洗涤3次。使用ECL
入5%山羊血清(山羊血清+PBS),37 ℃封闭15 min。 系统检测蛋白表达,Image J 软件进行灰度值分析,
进行一抗二抗孵育及DAB溶液显色,将切片置于显 计算蛋白的表达量。
微镜下观察染色合适即可停止染色,清水冲洗5 min。 1.2.6 免疫荧光染色
进行苏木精复染,自来水冲洗5 min,1%盐酸酒精分 SW480 细胞培养 24 h,PBS 洗涤 3 次后,室温下
化3 s,自来水冲洗5 min,脱水透明后滴加适量中性 4%多聚甲醛中固定15 min,然后使用0.5% TritonX⁃
树胶封片。使用 Image J 软件对免疫组化图像进行 100通透15 min。加入提前配制好的鬼笔环肽染色
鉴定和分析,并计算结直肠癌和癌旁标本组织的阳 工作液,室温孵育 30 min 后,PBS 清洗 3 次,用 DAPI
性率。评价标准:深棕色为强阳性,棕黄色为中度 溶液复染细胞核,滴加抗荧光淬灭封片剂封片,置
阳性,浅黄色为弱阳性,蓝色细胞核为阴性。 于激光共聚焦显微镜下观察并分析荧光图像。
1.2.3 慢病毒感染 1.2.7 细胞划痕实验
慢病毒颗粒使用 Lenti⁃X HT 包装系统制备。 将 SW480 细胞和 SW620 细胞接种于 96 孔板
5 上,待细胞密度达 90%时,使用无菌枪头在细胞层
将细胞以4×10 个/孔的数量接种于添加了 10% FBS
的DMEM的6孔板中。培养24 h后,细胞汇合度约为 上划痕,PBS 清洗 3 次后,去除划下的细胞,加入无
50%~70%,将培养基换成900 μL无血清DMEM。慢 血清培养基,置于 37 ℃、5% CO2的培养箱中培养,
病毒在 Opti⁃MEM 中连续稀释,以获得 10~100 的不 在 0、48 h 置于显微镜下观察并拍照,划痕宽度用
同 MOI。每孔加入总共 100 μL 稀释的慢病毒并培 Image J软件计算。
养24 h,更换培养基并培养72 h,含嘌呤霉素的培养 1.2.8 Transwell实验
基用于选择转导细胞。EZH2 mimic组使用EZH2过 细胞饥饿12 h后,将各组转染后的SW480细胞
表达慢病毒感染SW480细胞与SW620细胞。 和 SW620 细胞以 5×10 个/孔加入含有 200 μL 无血
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将 SW480、SW620 细胞分为 4 组:EZH2 NC 组, 清培养基的 Transwell 小室中,下室加入 600 μL 含
EZH2 mimic组,EZH2 NC+细胞松弛素D(0.1 μg/mL) 10%胎牛血清的 DMEM 培养基,37 ℃孵育 48 h 后,
组,EZH2 mimic+细胞松弛素D(0.1 μg/mL)组。 用棉签去除上室内残留的细胞,膜下表面细胞用
1.2.4 裸鼠模型建立及分组 2%结晶紫染色。在显微镜下取 5 个不同视野进行
将 24 只 6~8 周龄健康裸鼠随机分成 EZH2 NC 拍照,并计数膜下表面的细胞数量,取平均值。
组、EZH2 mimic 组、EZH2 NC+细胞松弛素 D 组和 1.2.9 CCK⁃8实验
EZH2 mimic+细胞松弛素D组,每组各6只。取转染 将 SW480 细胞和 SW620 细胞以 2×10 个/孔的
3
3 代后的 SW480 细胞 150 μL(含 1×10 个细胞)接种 浓度培养于96孔板中,并置于培养箱中培养。在0、
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