Page 44 - 南京医科大学自然科学版第1期

第41卷第1期
· 38 · 南 京 医 科 大 学 学 报 2021年1月

苦参碱浓度（g/L）
**
0 0.4 0.8
*
900
800
（ 个 ） 700
600
迁移细胞数 500
400
300
200
100
0
0 0.4 0.8
苦参碱浓度（g/L）
两组相比，P＜0.05，P＜0.01，n=6。
**
*
图3 苦参碱对各组细胞迁移能力变化的影响（结晶紫染色，×200）
Figure 3 Effects of matrine on the changes of cell migration in each group（crystal violet staining，×200）

表1 各组细胞上清培养液中MMP⁃9、VEGF含量变化 **
Table 1 Changes of MMP ⁃ 9 and VEGF in supernatant 2.0 *
1.8
medium of each group （x ± s） mRNA相对表达量 2.2
1.6
苦参碱浓度 MMP⁃9（ng/mL） VEGF（pg/mL） 1.4
1.2
0 g/L 54.31 ± 12.87 ** 654.33 ± 73.47 1.0
0.8
**
0.4 g/L 32.19 ± 9.39 0 378.71 ± 48.98 * 0.6
**
0.8 g/L 19.96 ± 6.37 0 159.67 ± 39.22 ** GSK⁃3β 0.4
0.2
与空白组相比，P＜0.05，P＜0.01，n=3。 0.0
**
*
0 0.4 0.8
苦参碱浓度（g/L）
2.6 苦参碱对Caski细胞β⁃catenin蛋白及其磷酸化
**
的影响
*
随着苦参碱处理浓度的逐步升高，Caski细胞内
β⁃catenin 蛋白含量逐渐减少，p⁃β⁃catenin（phospho 0.8
S37）蛋白含量逐渐增多，且与空白组相比，0.4、0.8 g/L Wnt mRNA相对表达量 1.0
0.6
处理组差异均具有统计学意义（P＜0.01，图5）。 0.4
3 讨 论 0.2
0.0
大量研究表明苦参碱具有显著的抗癌作用，其 0 0.4 0.8
苦参碱浓度（g/L）
可抑制肿瘤细胞的增殖、诱导肿瘤细胞凋亡、阻止
两组相比，P＜0.05，P＜0.01，n=3。
*
**
血管生成、侵袭、迁移，且其不良反应小 ［16］ ，目前，苦
图4 各组细胞GSK⁃3β、Wnt2B mRNA表达量变化
参碱在肝癌、胃癌、乳腺癌等肿瘤中的作用已有大
Figure 4 Changes of mRNA expression levels of GSK⁃3β
量研究，表现出良好的抗癌作用 ［17-19］ 。但苦参碱对 and Wnt2B in each group
*
苦参碱浓度（g/L） 1.0 * 1.0 *
β⁃Catenin蛋白相对表达量 p⁃β⁃Catenin蛋白相对表达量
0 0.4 0.8
p⁃β⁃Catenin 86 kDa 0.8 0.8 *
β⁃Catenin 86 kDa 0.6 0.6
β⁃actin 42 kDa 0.4 0.4
0.2
0.2
0.0
0 0.4 0.8 0.0 0 0.4 0.8
苦参碱浓度（g/L） 苦参碱浓度（g/L）
两组相比，P＜0.01，n=3。
*
图5 各组细胞β⁃catenin、p⁃β⁃catenin蛋白变化
Figure 5 Changes of β⁃catenin and p⁃β⁃catenin in each group