Page 18 - 南京医科大学学报自然科学版
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第42卷第7期
·914 · 南 京 医 科 大 学 学 报 2022年7月
核 心 作 用 ,诱 导 胰 岛 自 身 抗 原 耐 受 有 望 治 愈 探究负载2.5HIP的tolDC对致糖尿病性BDC2.5 T细
T1DM。但目前不管是针对胰岛自身抗原如胰岛 胞的免疫调节作用。
素、谷氨酸脱羧酶(glutamate decarboxylase,GAD),
1 材料和方法
还是针对一些致病表位肽如胰岛素B9⁃23、DiaPep277
等的抗原特异性免疫耐受治疗,均未达到理想的效 1.1 材料
果,这主要由于自身反应性 T 细胞识别的表位仍未 实验动物均为SPF级别,实验所用的8~12周龄
完全明确 。越来越多的证据表明,免疫系统对β细 NOD 雌鼠、6~13 周龄 BDC2.5 TCR 转基因雌鼠均来
[1]
胞的攻击很可能是由于β细胞受到应激或病毒感染 自南京大学模型动物研究中心。实验动物的饲
从而产生新生抗原或表位引起的 [2- 4] ,新表位在 养、使用及处理均经过南京医科大学实验动物伦
T1DM 发病机制中可能发挥重要作用 [5-6] ,它的产生 理委员会审批(批准编号:IACUC⁃2011058)。实验
解释了为何自身反应性T细胞能逃脱胸腺的阴性选 所用的试剂包括:RPMI1640培养基、胎牛血清(fetal
择来攻击β细胞。美国的 Kathryn 教授利用致糖尿 bovine serum,FBS)、磷酸盐缓冲液(phosphate buffer
病性BDC CD4 T细胞克隆系来识别β细胞蛋白提取 saline,PBS)(Gibco 公司,美国);粒细胞集落刺激因
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物,发现了一种由胰岛素与β细胞分泌颗粒内其他 子(granulocyte⁃macrophage colony⁃stimulating factor,
抗原共价交联剪切融合而成的新表位多肽,将其命 GM⁃CSF)、白介素(interleukin,IL)⁃4(Peprotech 公
[7]
名为“hybrid insulin peptide(HIP)” 。在 T1DM 患者 司,美国);1α,25⁃二羟基维生素 D3(VitD3)、脂多
和动物模型NOD(non⁃obese diabetic)小鼠体内均存在 糖(lipopolysaccharide,LPS)(Sigma 公 司 ,美 国);
识别这种致病性表位的自身反应性CD4 T细胞 [8-9] 。 CellTrace CFSE 细胞增殖试剂(Invitrogen 公司,美
+
基于这种新表位诱导抗原特异性免疫耐受为T1DM 国);小鼠 IL⁃12p70 细胞因子检测试剂盒(R&D 公
的治疗提供了新的研究方向 。 司 ,美 国);小 鼠 转 化 生 长 因 子 ⁃ β(transforming
[6]
树突状细胞(dendritic cell,DC)作为强大的专 growth factor⁃β,TGF⁃β)细胞因子检测试剂盒(深圳
职抗原提呈细胞,不仅可以诱导免疫反应发生,而 欣博盛);2.5HIP 序列 EVEDPQVAQLELGGGPGAG⁃
且在诱导中枢和外周耐受、维持免疫稳态中也发挥 DLQTLALWSRMDQL⁃AKELTAE(上海吉尔生化公
着重要作用 [10] 。一方面,在经典免疫反应中,外周 司合成);小鼠 CD4 T 细胞阴选磁珠、autoMACS
+
未成熟 DC(imature DC,iDC)在遇到抗原和危险信 Runnning Buffer(美天旎公司,德国)。实验中所用
号后上调共刺激分子(CD80、CD86、CD40 等)、主要 的流式抗体包括:FITC⁃CD11c、PE⁃CD80、Percp⁃
组织相容性复合体(major histocompatibility complex, cy5.5⁃CD86、APC⁃MHCⅡ、APC⁃PD⁃L1、APC⁃CD4、
MHC)分子和促炎细胞因子、趋化因子的表达,成为 FITC⁃CD44、PE/cyanine7⁃CD69、BV421⁃CD25、PE⁃
成熟的 DC(mature DC,mDC)从而能够迁移到淋巴 Foxp3 均来自美国 Biolegend 公司;流式细胞术所用
结并诱导免疫反应发生;另一方面,还存在着一群 破 核 试 剂 eBioscience TM FOXP3/Transcription Factor
耐受性 DC(tolerogenic DC,tolDC)通过低表达共刺 Staining Buffer Set(Invitrogen公司,美国)。
激分子、高表达共抑制分子、分泌抗炎细胞因子等 1.2 方法
机制诱导 T 细胞克隆失能、凋亡等。因此,tolDC 作 1.2.1 小鼠骨髓来源的DC培养
为一种细胞疗法在自身免疫疾病包括T1DM的治疗 取 8~12 周龄的 NOD 雌鼠,分离其肱骨、胫骨,
中富有前景 [11-13] 。然而目前 tolDC 在 T1DM 方面的 75%酒精消毒5 min后用PBS冲洗去除两端骨骺,用
研究主要是非抗原特异性或是仅针对单一抗原 1 mL注射器冲洗骨髓腔内的骨髓细胞至RPMI1640
[14]
(GAD)或抗原肽(胰岛素原肽) ,而表位扩展等原 完全培养基中,裂红处理后用 200 目的滤网过滤
因产生的新表位如2.5HIP可能在T1DM发病机制中 并洗涤,每只鼠大概可以获得 2×10 ~4×10 个骨髓
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发挥了重要作用。2.5HIP是由胰岛素原的C肽片段 细胞,计数后用 RPMI1640 完全培养基重悬并调
(LQTLAL)与嗜铬粒蛋白A的WE14片段(WSRMD) 整密度至 1×10 个/mL。实验设置 iDC 组、tolDC 组、
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融合形成的杂交肽,它是NOD小鼠体内分离出来的 LPS⁃tolDC 组、LPS⁃iDC 组(即 mDC 组),每组均加入
致糖尿病性的 T 细胞克隆系 BDC2.5 T 细胞 [15] 特异 GM⁃CSF 20 ng/mL 和 IL⁃4 10 ng/mL,tolDC 及 LPS⁃
性识别的抗原表位 。针对2.5HIP诱导抗原特异性 tolDC 组额外加入 VitD3(1×10 mol/L)于 6 孔板中
[7]
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免疫耐受是 T1DM 治疗的新思路,所以本研究旨在 培养,每隔 2~3 d 进行换液,于培养的第 7 天收集