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第42卷第9期 王 莹，陈 晨，陈 刚. BMP⁃2缓释型PLGA微囊作为引导骨再生支架的初步研究［J］.
2022年9月 南京医科大学学报（自然科学版），2022，42（09）：1216-1222 ·1219 ·

A B C
×100 ×200
18
16
（ % ） 12
14
10
比例 8 6
4
2
0
0.01 0.1 1 10 100 1 000 3 000
粒径（μm）
A：光学显微镜下观察包封0.1%亚甲蓝的PLGA微囊（×100）；B：PLGA微囊粒度分析结果；C：SEM观察PLGA微囊。
图2 双通道微量注射泵制备的PLGA微囊表征
Figure 2 The characterizations of PLGA microspheres prepared by dual⁃channel micro⁃syringe pump

壁的PLGA微囊大小均一，表面光滑，粒径均值无明 过程中囊壁厚薄不同未见对微囊的降解速率产生
显差异，约为167.58 μm。 明显影响。
2.2 PLGA微囊囊壁厚度分析 2.4 PLGA微囊细胞相容性检测结果
荧光显微镜下两组囊壁厚度的 PLGA 微囊（图 图 5 可见细胞培养第 7 天时加入 PLGA 微囊的
3A 、B），图像处理软件Image J测量微球囊壁厚度统 实验组与对照组的细胞均能正常增殖，并且细胞可
计结果显示：A 型同轴针头制备的 PLGA 微囊囊壁 黏附到 PLGA 微囊表面；CCK⁃8 实验结果显示细胞
厚度为（23.82±7.10）μm；B型同轴针头制备的PLGA 从1、3、5、7 d都表现出增长趋势，且加入PLGA微囊
微囊的囊壁厚度为（35.31±5.55）μm，B 型针头制备 浸提液培养后细胞活力与对照组基本无差异（1、3、
的 PLGA 微囊囊壁厚度明显大于 A 型同轴针头，差 7 d时，P > 0.05）。
异具有统计学意义（P < 0.001，图3C、D）。 2.5 细胞趋化实验
2.3 PLGA微囊的降解 趋化实验结果显示（图6），与空白组相比，两组
两种厚度 PLGA 微囊均可在 60 d 左右基本降 载有 BMP⁃2 的微囊作用 24 h，诱导细胞迁移量明显
解，SEM观察其不同时间点的微囊形态变化，35 d后 增多，差异有统计学意义。而载有 BMP⁃2 的薄型
PLGA 微囊在 SEM 镜下基本丧失其原本特征（图 PLGA微囊24 h内诱导细胞迁移的量也明显多于厚
4A）。PLGA 微囊降解动力学变化（图 4B），随着时 型PLGA微囊，差异有统计学意义（P < 0.05）。
间的推移，PLGA微囊质量逐渐减少，最初20 d微囊
3 讨 论
降解速度较慢，20 d之后微囊降解速度加快，降解末
期 42 d 以后降解速度减慢直至降解完成。降解全 传统乳液挥发法制备的PLGA微囊多用作缓释

A C D
60 60

（ 个 ） 40 （ 个 ） 40
微囊计数 微囊计数

B 20 20

0 0
10 15 20 25 30 35 40 20 25 30 35 40 45 50
微囊囊壁厚度（μm） 微囊囊壁厚度（μm）

A：薄型PLGA微囊（×100）；B：厚型PLGA微囊（×100）；C：薄型PLGA囊壁厚度统计结果，厚度为（23.82±7.10）μm；D：厚型PLGA囊壁厚度
统计结果，厚度为（35.31±5.55）μm。两组微囊囊壁厚度比较，P < 0.001（n=286）。
图3 不同囊壁厚度的PLGA微囊
Figure 3 PLGA microspheres with different shell thickness