Page 75 - 南京医科大学学报自然科学版
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第43卷第5期 顾圣玮,顾 浩,马晴晴,等. 蛋白酶激活受体2经RhoA信号抑制人内皮祖细胞增殖、迁移功能[J].
2023年5月 南京医科大学学报(自然科学版),2023,43(5):655-662 ·657 ·
receptor⁃2,VEGFR⁃2)、SDF⁃1、趋化性细胞因子受体
2 结 果
4(C⁃X⁃C chemokine receptor type 4,CXCR⁃4)mRNA
表达量。100 pmol/L Tr或100 μmol/L SLIGKV⁃NH2 刺 2.1 类胰蛋白酶、SLIGKV⁃NH2抑制EPC增殖与迁移
激 EPC 24 h,PBS 清洗 2 遍,使用 TRIzol 提取细胞总 Tr 是 PAR2 的天然激动剂。免疫印迹结果显
RNA,逆转录试剂盒逆转录后加入 SYBR 进行实时 示,EPC存在PAR2表达,给予Tr100 pmol/L处理24 h
定量PCR实验。扩增条件为下:预变性95 ℃30 s → 后,PAR2表达上调(P < 0.05),PAR2抑制剂FS可取
变性95 ℃ 5 s → 退火60 ℃ 30 s → 延伸72 ℃ 10 min, 消此效应(图 1A),提示类胰蛋白酶可通过 PAR2 引
共 40 个循环。以 GAPDH 为内参,计算 2 -∆∆CT 值,最 起自身反馈性表达增高。细胞增殖、迁移是血管生
后比较目的基因相对表达量。所用引物委托南京 成的重要事件。本研究结果显示,不同浓度(1、10、
金斯瑞生物科技有限公司合成:人 GAPDH 上游引 50、100、1 000 pmol/L)Tr处理24 h可导致细胞增殖、
物5′⁃AGAAGGCTGGGGCTCATTTG⁃3′,下游引物5′⁃ 迁移功能明显减弱(P < 0.05,图1B、C)。AP作为激
AGGGGCCATCCACAGTCTTC⁃3′;人VEGF⁃A上游引 活 PAR2 的模拟合成肽,亦可剂量依赖性(1、10、
物 5′⁃AGGGCAGAATCATCACGAAGT⁃3′,下游引物 50、100、200 μmol/L)抑 制 EPC 增 殖 与 迁 移(P <
5′⁃AGGGTCTCGATTGGATGGCA⁃3′;人 VEGFR⁃2 上 0.05,图1D、E),浓度≥100 μmol/L 时差异具有显著
游引物 5′⁃GGCCCAATAATCAGAGTGGCA⁃3′,下游 性。据上述结果,后续实验选择 100 pmol/L Tr 和
引物5′⁃CCAGTGTCATTTCCGATCACTTT⁃3′;人SDF⁃1 100 μmol/L AP进行。
上游引物 5′⁃ATTCTCAACACTCCAAACTGTGC⁃3′, 2.2 PAR2 激活下调 EPC 增殖、迁移相关细胞因子
下游引物 5′⁃ACTTTAGCTTCGGGTCAATGC⁃3′;人 及受体表达
CXCR ⁃ 4 上 游 引 物 5′ ⁃ ACTACACCGAGGAAAT⁃ EPC 释放的生长、趋化因子及其受体参与缺血
GGGCT⁃ 3′,下游引物 5′⁃CCCACAATGCCAGTTA⁃ 组织处细胞的增殖与迁移。实时定量 PCR 结果显
AGAAGA⁃3′。 示,Tr、SLIGKV⁃NH2下调VEGF⁃A、VEGFR⁃2、SDF⁃1、
1.2.5 ELISA CXCR⁃4 的 mRNA 水平(P < 0.05,图 2A)。ELISA 结
ELISA 检测 EPC 上清中 VEGF⁃A 及 SDF⁃1 的蛋 果亦显示,PAR2激活后EPC上清中VEGF⁃A及SDF⁃1
白表达量。100 pmol/L 类胰蛋白酶或 100 μmol/L 的蛋白表达量显著下降(P < 0.05,图2B)。
SLIGKV⁃NH2刺激EPCs 24 h后收集细胞上清,采用 2.3 PAR2抑制剂FS取消PAR2活化引起的EPC功
人 VEGF⁃A、SDF⁃1 ELISA 检测试剂盒,根据说明书 能改变
进行检测。 为了探讨PAR2激动剂引起的EPC功能改变是
1.2.6 蛋白质免疫印迹实验 否直接经由PAR2受体实现,本研究选用PAR2抑制
蛋白质免疫印迹实验检测 EPC 中 PAR2、RhoA 剂 FS 以阻断 PAR2 受体功能。200 μmol/L FS 可取
蛋白水平。不同药物作用 EPC 24 h 后收集细胞, 消 2 种激动剂诱导的 EPC 细胞增殖、迁移功能下调
200 μL RIPA 冰 上 裂 解 15 min ;收 集 裂 解 物 , 效应(P < 0.05,图3)。
12 000 r/min 离心 20 min 后吸取上清,十二烷基 2.4 RhoA参与介导PAR2活化引起的EPC增殖、迁
硫酸钠蛋白变性;制胶上样,80~120 V 恒压电泳, 移抑制过程
300 mA 恒流 PVDF 转膜;含 Tween 20 的 Tris 洗涤缓 作为 PAR2 下游的重要信号分子,RhoA 参与
冲液(tris buffered saline tween,TBST)配制 5%脱脂 调节细胞的骨架重塑、黏附运动等功能。免疫印
奶粉溶液,室温封闭 1 h;加入抗 PAR2(1∶1 000)、 迹结果显示,Tr、AP 处理 EPC 24 h 后,RhoA 表达
RhoA(1∶1 000)、GAPDH(1∶1 000)抗体 4 ℃孵育过 显著上调(P < 0.05),PAR2 抑制剂 FS 可取消此上
夜;TBST 洗涤后,与辣根过氧化物酶标记的山羊抗 调效应(图 4A)。同时,予以特异性 RhoA 抑制剂
兔 IgG 抗体孵育;ECL 化学发光液曝光,并用 Bio⁃ Y⁃27632(图 4B,C),PAR2 激动剂引起的 EPC 增
Rad成像系统及Image J软件进行分析。 殖、迁移抑制被逆转(P < 0.05)。
1.3 统计学方法
3 讨 论
应用 Graphpad 6.0 进行分析处理,计量资料以
均数±标准误(x ± Sx )表示,单因素方差分析比较多 本研究通过分离、培养人外周血来源的EPC,发
组间差异。P < 0.05为差异有统计学意义。 现选择性激活 PAR2 可经由 RhoA 信号抑制 EPC 增