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第45卷第2期
·158 · 南 京 医 科 大 学 学 报 2025年2月
靶点和新策略是临床研究的重要课题。铁死亡是 Lipofectin 3000(Invitrogen 公司,美国);DMEM 培养
铁依赖性的、细胞内脂质过氧化引起的细胞死亡, 基和胎牛血清(HyClone 公司,美国);嘌呤霉素(pu⁃
作为一种程序性细胞死亡的新形式,不仅可以抑制肿 romycin,MCE 公司,美国);总 RNA 提取试剂盒(南
瘤生长,在增强免疫治疗反应和克服癌症治疗耐药性 京诺唯赞公司)。
上具有巨大潜力,已成为癌症治疗研究的热点 [1-2] 。 1.2 方法
最新研究表明,对传统治疗有抵抗力或有高转移倾向 1.2.1 细胞培养
的癌症类型可能对铁死亡易感,尤其是恶性黑色素瘤 黑色素瘤细胞株 B16F10、B16F1 均使用含有
具有较高 RAS 基因突变率,铁死亡诱导剂 RSL3 和 10%胎牛血清的 DMEM 培养基,置于 37 ℃、5% CO2
Erastin 对 RAS 突变的黑色素瘤细胞具有选择致死 培养箱中培养,取对数生长期的细胞进行后续实验。
[3]
活性,铁死亡效应与肿瘤治疗疗效密切相关 。因 1.2.2 细胞转染
此,探讨黑色素瘤细胞对铁死亡的防御机制,增强 细胞铺板后,待细胞汇合度为 70%~80%时,按
黑色素瘤细胞对铁死亡的易感性,将为靶向铁死亡 照 Lipofectin3000 说明书进行质粒或 siRNA 片段转
治疗黑色素瘤提供可能的潜在靶点。 染,转染 6~8 h 后换成含 10%胎牛血清的 DMEM 培
膜联蛋白 A5(annexin A5,ANXA5)是一种钙离 养基继续培养24~48 h,然后收集细胞,采用总RNA
子依赖性的磷脂结合蛋白,能特异、高效地结合磷 提取试剂盒和RIPA裂解液分别提取细胞总RNA和
脂酰丝氨酸(phosphatidylserine,PS),具有抗凝血、 总蛋白进行后续实验。
抗炎症,抗肿瘤等活性,并广泛应用于细胞凋亡检 1.2.3 ANXA5基因的敲除及敲减
测和体内分子影像技术 [4-7] 。近年来,多项研究表明 在黑色素瘤细胞 B16F10 中采用 CRISPR⁃Cas9
ANXA5在多种类型的肿瘤中异常表达,成为预测肿 技术敲除 ANXA5 基因,根据 Mus musculus ANXA5
瘤发展的生物标志物,如结肠癌、肝癌、肾癌、乳腺 (cDNA clone MGC:5730 IMAGE:3488901)设计gRNA
[8]
癌等,在临床上对诊断、预后具有重要价值 。然而 5′ ⁃ caccgcacgactctacgatgcctac ⁃ 3′ ,靶 向 ANXA CDS
ANXA5 在黑色素瘤中的表达及其生物学分子机制 (coding sequence)序列在第256~275位置。将gRNA
并不清楚。本研究探讨了 ANXA5 在黑色素瘤中的 退火产物与 LentiCRISPR v2 酶切载体混合 16 ℃酶
表达及其对铁死亡效应的影响,初步揭示其可能的 连过夜,连接产物转化感受态细胞,涂板后挑取单克
调控机制,以期为黑色素瘤治疗提供新的潜在靶 隆菌落进行基因测序。构建好的质粒转染 B16F10
点,增强黑色素瘤的铁死亡易感性。 细胞构建敲除株,采用筛选压力 2 μg/mL puromycin
进行培养,最后采用梯度稀释接种 96 孔板筛选
1 材料和方法
ANXA5⁃KO单克隆敲除细胞株。
1.1 材料 采用 RNAi 技术敲低 ANXA5,合成靶向 human
小鼠黑色素瘤细胞株 B16F10、B16F1 和人源黑 ANXA5 的 siRNAs 序列为:5′⁃AACTACTCCTTGCT⁃
色素瘤细胞 A375 由本实验室保存。黑色素瘤组织 GTTGTGA⁃3′(siANXA5#1)和5′⁃AAGCCTGGAAGAT⁃
芯片编号 MEL961(上海威奥生物科技有限公司); GACGTGGT⁃3′(siANXA5#2),通过脂质体 lipo3000
gRNA以及qPCR引物(南京金斯瑞生物科技股份有 转染A375细胞株,Western blot验证siRNA敲减效果。
限公司);抗体 ANXA5(#8555,CST 公司,美国);酰 1.2.4 CCK⁃8检测
4
基辅酶 A 合成酶长链家族成员 4(acyl⁃CoA synthe⁃ 将细胞浓度调整为1×10 个/mL,每孔100 μL接
tase long⁃chain family member 4,ACSL4)(ab155282, 种 96 孔板,每组设置 3 个复孔,每孔再补 100 μL 培
Abcam公司,英国);β⁃actin(武汉塞维尔生物科技公 养基,置于37 ℃、5% CO2细胞培养箱中培养;质粒或
司);CCK⁃8 检测试剂盒、还原性谷胱甘肽(glutathi⁃ siRNA 转染24~48 h后每孔加入10 μL CCK⁃8溶液,
one,GSH)和氧化型谷胱甘肽(GSSG)检测试剂盒、 设置培养液的空白孔作为对照组,37 ℃孵育 2 h 后
脂质氧化丙二醛(malonaldehyde,MDA)检测试剂盒、 在酶标仪上检测各组在450 nm吸光度值,记录每组
乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase,LDH)试剂盒、 不同复孔的数据进行统计分析。
RIPA裂解液(上海碧云天生物技术有限公司);Fer⁃ 1.2.5 LDH、GSH和MDA含量检测
5
roOrange(DOJINDO 公司,日本);C11⁃BODIPY(Cay⁃ 将细胞浓度调整为1×10 个/mL,每孔500 μL接
man公司,美国);RSL3、Erastin(Selleck公司,美国); 种24孔板铺板。次日,根据实验设计分成对照组,不

