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第45卷第7期 陶子凡,刘一纬,吴晓峰,等. Wnt/PCP通路和细胞外基质力学信号共同调控CNN2促进肝癌
2025年7月 细胞群体性迁移[J]. 南京医科大学学报(自然科学版),2025,45(7):936-944 ·937 ·
PCP signaling pathway regulates the expression and function of CNN2,while CNN2,as a mediator of mechanical signals,is regulated
by ECM mechanical signals. Together,they synergistically drive the collective migration of HCC cells.
[Key words] hepatocellular carcinoma;calponin 2;collective migration;Wnt/PCP signaling pathway;mechanical signaling
[J Nanjing Med Univ,2025,45(07):936⁃944]
肝癌具有高度侵袭性和转移性,这些特征显著 抗体(Abcam公司,美国)。
影响患者预后 。因此,深入研究肝癌的侵袭与转 1.2 方法
[1]
移机制,对开发有效的靶向治疗策略具有重要的临 1.2.1 人组织标本及微阵列
床意义。近年研究揭示,肿瘤的转移实际上是由一 组 织 微 阵 列 芯 片(tissue microarray,TMA)由
群紧密连接的肿瘤细胞协同向邻近组织迁移,即群 224 个肝癌样本及其相应的邻近非癌组织组成,样
体性迁移,而非单个细胞独立迁移 [2-4] 。这一过程不 本由南京医科大学第一附属医院肝胆中心收集。
仅体现细胞间的相互作用,也反映肿瘤细胞在迁移 所有患者于 2009 年 1 月—2010 年 12 月接受肝癌根
过程中整体性的行为模式。在肝癌的进展过程中, 治性手术。自 2016 年起,每 3 个月对患者进行 1 次
肝纤维化被认为是推动肿瘤侵袭和转移的一个关 随访,直至 2019 年 10 月 25 日或患者死亡。所有研
键因素。细胞外基质(extracellular matrix,ECM)的 究程序均已获得南京医科大学伦理委员会批准(伦
[5]
重塑和变化在这一过程中扮演至关重要的角色 。 理批号:2021⁃SREA⁃287)。CNN2 的染色评分结合
特别是在纤维化状态下,ECM的物理和生物力学特 细胞染色强度和免疫反应细胞的百分比评估,采用
性显著改变,从而影响肝癌细胞的迁移和侵袭能 免 疫 反 应 评 分(immunoreactivity score,IRS)法 。
力。细胞群体性迁移的动力学过程,实际上是由 CNN2免疫染色强度评分为0~3分(0分,阴性;1分,
ECM重塑所引发的力学信号调控的,这一过程受到 弱;2 分,中等;3 分,强);免疫反应细胞的百分比评
ECM 的生物力学特性,尤其是其压力、张力和刚度 分为 1 分(0~25%)、2 分(>25%~50%)、3 分(>50%~
[6]
的影响 。 75%)和 4 分(>75%~100%)。由两名病理医生独立
钙调蛋白2(calponin 2,CNN2)是一种肌动蛋白 对每个微阵列组织点进行评分,并将平均评分作为
结合蛋白,主要定位于应力纤维末端及细胞膜的外 最终评分。根据IRS评分,CNN2的表达水平分为低
周突起区域,作为细胞力学感受因子,有助于细胞 表达(IRS:0~4分)和高表达(IRS:6~12分)。
感知与响应外部的机械应力 。研究表明,CNN2在 1.2.2 细胞培养
[7]
多种恶性肿瘤中呈异常高表达 [8-11] ,并参与调控细 肝癌细胞株 Huh⁃7 使用含有 10%FBS 的 DMEM
胞形态维持、迁移能力及收缩功能等关键生物学 培养液,置于37 ℃、5% CO2培养箱中培养,取对数生
过程,在肿瘤细胞的侵袭与转移中发挥着重要作 长期的细胞进行后续实验。
用 [12] 。然而,关于 CNN2 与肝癌中 ECM 之间相互作 1.2.3 慢病毒感染
用及其具体调控机制的研究仍相对缺乏。本研究 敲低CNN2和Wnt11的shRNA慢病毒载体(LV⁃
旨在探讨CNN2在肝癌细胞群体性迁移过程中的功 CNN2⁃shRNA、LV⁃Wnt11⁃shRNA)由上海科斯瑞生
能及其潜在分子机制,为肝癌的侵袭转移研究及靶 物科技有限公司合成并包装。将 Huh⁃7 细胞以 2×
向干预策略提供新的理论依据和研究思路。 10 个/孔的密度接种于 6 孔板,培养至细胞密度达
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50%~70%时,按照推荐的剂量加入慢病毒液。感染
1 材料和方法
后继续培养48 h,随后用PBS冲洗细胞,并更换为新
1.1 材料 鲜完全培养液。感染48 h后,使用10 μg/mL嘌呤霉
人源肝癌细胞Huh⁃7由本实验室保存。DMEM 素对细胞进行筛选,期间每2~3 d更换1次筛选培养
高糖培养基、胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)、 液,持续 5~7 d,直至未感染对照组细胞完全死亡。
0.25%胰蛋白酶(Gibco 公司,美国);引物由南京金 筛选后的细胞用于后续实验。
斯瑞公司合成;DEPC处理水、PMSF、RIPA蛋白裂解 1.2.4 划痕实验
液(上海碧云天公司);Transwell 小室(康宁公司,美 将细胞接种在 6 孔板中,用不含 FBS 的培养液
国);CNN2 抗体、Wnt11 抗体、GAPDH 抗体、Tublin 培养 24 h。然后用 200 μL 的移液枪头尖端在每个

