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第41卷第7期               周小蓉,陆 霞,李建涛,等. 成年小鼠ECSIT 3′⁃UTR的鉴定及功能分析[J].
                  2021年7月                     南京医科大学学报(自然科学版),2021,41(07):937-942                       ·941 ·


                             A                                   B
                                       NC  siRNA1 siRNA2 siRNA3 siRNA4      NC  siRNA1 siRNA2 siRNA3 siRNA4
                                ECSIT                    55 kDa      ECSIT                    55 kDa

                               GAPDH                     37 kDa     GAPDH                     37 kDa
                                  1.5     **                           1.5     *
                                        **                                   *
                                 ECSIT 1.0                            ECSIT 1.0

                                  0.5                                  0.5

                                   0                                    0
                                      NC siRNA1 siRNA2 siRNA3 siRNA4       NC siRNA1 siRNA2 siRNA3 siRNA4
                   A:Hepa1⁃6细胞转染siRNA1~4后,Western blot检测ECSIT蛋白表达水平;B:RAW264.7细胞转染siRNA1~4后,Western blot检测ECSIT蛋
                白表达水平。两组比较,P < 0.05,P < 0.01(n=3)。
                                 *
                                       **
                                        图3 siRNA干扰RAW264.7和Hepa1⁃6细胞中 ECSIT的表达
                             Figure 3 siRNAs in RAW264.7 and Hepa1⁃6 cells interfere with the expression of ECSIT
                难。本研究测序所得ECSIT 3′⁃UTR 长度为346 bp,                  中,Toll样受体的激活促进TRAF6易位至线粒体,在
                与基因库中 ECSIT mRNA(XM_011242538.4)的第                线粒体外周与 ECSIT 相互作用,ECSIT 发生泛素化
                2 231~2 576碱基序列一致率达99%。                           并在线粒体外周富集,导致线粒体和细胞活性氧生
                    已有研究报道,当 miRNA 与 mRNA 3′⁃UTR 序                成增加,有助于巨噬细胞内细菌的清除                   [21] 。此外,
                列不完全互补结合时,主要影响翻译过程,对mRNA                          ECSIT的缺失导致巨噬细胞代谢由有氧呼吸转变为
                稳定性没有明显影响;当 miRNA 与 mRNA 3′⁃UTR                   糖酵解,线粒体复合物Ⅰ的组装受损、活性下降。
                序列完全互补结合时,可能通过特异性切割 mRNA                          线粒体功能障碍时,ECSIT 通过与自噬调节因子
                                                                                                             [22]
                抑制翻译或者导致 mRNA 降解            [16] 。本研究结果发          Parkin结合并发生泛素化,导致线粒体自噬受损 。
                现 miR⁃7⁃5p 可能在 ECSIT 的表达调节中起重要作                   以上研究表明ECSIT在炎症相关Toll样受体信号级
                用,预测软件提示miR⁃7⁃5p与ECSIT 3′⁃UTR为不完                  联和线粒体功能中发挥重要作用。
                全序列互补,因此miR⁃7⁃5p可能通过影响翻译过程                            心力衰竭的机制是复杂和多样的,研究发现,
                从而影响ECSIT的表达。                                     TLR4 受体信号的激活通过促进炎症因子的产生和
                    哺乳动物细胞中内源性RNA干扰通路的存在,                         基质降解,促进心肌梗死后左室不良心室重构发生
                使其能够精确地调控基因表达,使用 siRNA 疗法在                        发展  [23] 。健康小鼠心脏驻留的巨噬细胞约占心肌
                治疗各种疾病方面取得了重大进展                [17] 。siRNA治疗      非心肌细胞群的6%~8%,抑制巨噬细胞招募并中和
                的序列可以根据编码靶蛋白的mRNA 序列来确定,                          巨噬细胞破坏性的促炎功能,可以促进衰竭心脏的
                一旦进入细胞质,siRNA 分子将被并入RNA 诱导沉                       恢复  [24] 。线粒体功能障碍是心力衰竭发展的一个
                                                          [18]
                默复合体(RNA⁃induced silencing complex,RISC) ,        关键因素,线粒体通过氧化磷酸化维持心肌收缩所
                siRNA 双链将在 RISC 复合体中分离,5′端更稳定的                    必需的能量,心力衰竭时期线粒体功能障碍,导致
                链被整合到活性的RISC复合体中,然后siRNA 通过                       能量代谢障碍,活性氧释放增加,加重心力衰竭后
                启动催化性 RISC 蛋白,引导 RISC 复合物寻找和剪                     的心脏损伤     [25] 。这些结果提示ECSIT在心力衰竭中
                切目的分子,从而达到抑制 mRNA 表达的目的                   [19] 。  可能发挥重要作用,需要进一步的研究证实。本研
                本研究结果显示,siRNA1、2 号干扰序列分别为第                        究获得了ECSIT 3′⁃UTR碱基序列,并验证了miR⁃7⁃
                                                                  5p 作为 ECSIT 3′⁃UTR 潜在结合分子调控 ECSIT 表
                601~619和第992~1 009碱基,这些区域可能是调节
                                                                  达,这可为后续ECSIT的研究提供分子基础。
                ECSIT mRNA表达的功能序列。
                    已有研究报道,脂多糖刺激巨噬细胞 TLR4 受                      [参考文献]
                体后,ECSIT 与 TAK1、TRAF6 结合形成内源性高分                  [1] KUERSTEN S,GOODWIN E B. The power of the 3′ UTR:
                子复合体,调节TAK1的活性,通过影响下游的级联                               translational control and development[J]. Nat Rev Genet,
                信号,促进炎症信号NF⁃κB的激活             [20] 。在巨噬细胞              2003,4(8):626-637
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