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第46卷第5期         王心雅,罗     琳,高 乾,等. PTPN6在胃癌中的作用及对NK细胞介导杀伤活性的影响[J].
                  2026年5月                    南京医科大学学报(自然科学版),2026,46(5):652-663,690                      ·655 ·


                DNA通过NanoDrop 2000紫外分光光度计检测其浓                     种于 6 孔板中,24 h 后使用 jetPRIME 试剂盒进行细
                度和纯度。随后使用 Agilent SureSelect Human All            胞转染,取 2 μg 质粒或者 5 nmol siRNA 与 200 μL
                Exon V6 富集外显子序列,并遵循标准流程构建文                        jetPRIME buffer 涡旋混匀,再加入 4 μL jetPRIME 试
                库,在Illumina测序平台进行双端 150 bp 测序。通                   剂,涡旋瞬离后室温静置10 min,更换细胞培养皿中
                过 Trimmomatic 软 件(v0.36)对 原 始 数 据 进 行 过           的培养基,将静置后的混合溶液加入培养皿中,轻
                滤,去除引物序列、接头序列及低质量序列,使用                            柔摇晃,使之混匀。24 h后更换培养基。
                BWA⁃MEM(v0.7.15)将高质量读段比对至人类参考                     1.2.9 慢病毒感染细胞和类器官

                基因组序列(GRCh37)。使用SAMtools 软件将BAM                       人 PTPN6 过表达慢病毒和对照慢病毒购于上
                文件排序,并使用 Picard 软件(v2.16)标记重复序                    海吉凯基因医学科技股份有限公司。MKN1细胞以
                列。使用 GATK(v4.1.7)对序列碱基的质量值进行                      感染复数(multiplicity of infection,MOI)=10 进行慢
                重新校正,并严格遵循推荐流程识别体细胞点突                             病毒感染,AGS细胞和YTN16细胞以MOI=20进行慢
                变和插入/缺失,并进行质控。通过初步质控的突                            病毒感染。当细胞融合率达30%~40%时,更换培养

                变纳入后续分析。所有体细胞突变均通过 Funco⁃                         基,加入冰上解冻的慢病毒液和终浓度为5 μg/mL的
                tator(v1.6.0)注释突变对应的基因和转录本信息、变                    Polybrene,混匀后放入细胞培养箱,24 h后更换培养
                异类型等信息。使用TitanCNA(v1.23.1)进行了拷贝                   基,继续培养 24~48 h,根据抗性的不同分别加入嘌
                数改变分析。使用SigProfiler工具进行突变特征的全                     呤霉素和杀稻瘟菌素持续筛选 7 d。胃癌类器官以
                基因组提取,并分解为COSMIC(v3)突变特征集。                        MOI=100 进行慢病毒感染。使用 TrypLE 吹散类器
                1.2.5 细胞培养                                        官,转移到离心管中,放入 37 ℃细胞培养箱孵育5~
                    MKN1和AGS细胞使用含10%胎牛血清、1%青                      8 min,取出后吹打混匀,离心去上清液,用加入慢病
                霉素⁃链霉素的RPMI⁃1640培养基培养,YTN16细胞                     毒液和Polybrene的胃癌类器官培养基重悬类器官,
                使用含10%胎牛血清、1%青霉素⁃链霉素、1%L⁃谷氨                       加入48孔板中,放入37 ℃细胞培养箱孵育4~8 h,离
                酰胺、0.1%MITO serum extender 的DMEM培养基培              心去上清液,用PBS洗涤1遍后用基质胶重悬沉淀,
                              +
                养,NK92MI 细胞使用 NK92MI 细胞专用培养基培                     接种到 48 孔板中,放入培养箱 20 min,基质胶固化
                养,并放置于37 ℃、5% CO2恒温培养箱中。                          后,每孔加入300 μL胃癌类器官培养基。72 h后根
                1.2.6 胃癌类器官培养                                     据抗性的不同分别加入嘌呤霉素和杀稻瘟菌素持
                    用无菌手术刀将新鲜采集的胃癌组织解离成                           续筛选7 d。
                0.3 mm 大小的组织块,加入含胶原酶的DMEM培养                       1.2.10 qRT⁃PCR
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                基中,置于37 ℃摇床中消化30 min,收集细胞悬液,                          使用诺唯赞细胞总 RNA 提取试剂盒进行 RNA
                400 g 离心3 min。PBS洗涤后用基质胶重悬细胞沉                     提取,检测 RNA 提取浓度和纯度后,使用 5× Prime⁃
                淀,并接种于48孔板中,放入培养箱20 min,基质胶固                      Script RT Master Mix 逆转录合成试剂盒进行逆转
                化后,每孔加入300 μL胃癌类器官培养基。每3~4 d                      录,使用 TB Green premix EX Taq 试剂盒进行 qRT⁃
                更换1次培养基,并使用TrypLE 酶每1~2周传代1次。                     PCR。以β⁃actin为内参基因进行分析。具体各基因
                1.2.7 PTPN6的过表达质粒和siRNA的构建                        引 物 序 列 如 下 :β ⁃ actin(F:5′ ⁃ CATGTACGTTGC⁃
                    PTPN6 过表达质粒(pcDNA3.1⁃PTPN6)由优宝                TATCCAGGC⁃3′;R:5′⁃CTCCTTAATGTCACGCAC⁃

                生物公司构建,即将目的基因克隆到 pcDNA3.1⁃                        GAT)⁃3′;PTPN6(F:5′⁃GGTGTCCACGGTAGCTTCC⁃
                3xFlag⁃C 质粒载体上,经测序鉴定其序列完全正                        3′ ;R:5′ ⁃ ACAGGTCATAGAAATCCCCTGAG ⁃ 3′);
                确。由上海吉玛制药技术有限公司设计并合成2个                            HLA⁃A(F:5′⁃GCTCCCACTCCATGAGGTAT⁃3′;R:5′⁃
                针对PTPN6基因不同靶点的siRNA序列,分别命名                        AGTCTGTGACTGGGCCTTCA ⁃ 3′ );HLA ⁃ B(F:5′ ⁃

                为 siPTPN6⁃1(5′⁃GCCCAGUUCAUUGAAACCATT⁃             ACTGAGCTTGTGGAGACCAGA⁃3′;R:5′⁃GCAGCC⁃
                3′),siPTPN6⁃2(5′⁃GAGCAUGACACAACCGAAUTT⁃           CCTCATGCTGT⁃3′);HLA⁃C(F:5′⁃CTGGCCCTGA⁃
                3′),以及对照 siNC(5′⁃UUCUCCGAACGUGUCAC⁃               CCGAGACCTG⁃3′;R:5′⁃CGCTTGTACTTCTGTGTC⁃
                GUTT⁃3′)。                                         TCC⁃3′);HLA⁃E(F:5′⁃TTCCGAGTGAATCTGCG⁃
                1.2.8 细胞转染                                        GAC⁃3′;R:5′⁃GTCGTAGGCGAACTGTTCATAC⁃3′);
                    取对数生长期的细胞,以 2×10 个/孔的密度接                      MICA(F:5′⁃AGGGTTTCTTGCTGAGGTACA⁃3′;R:5′⁃
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